葛根多糖提取工艺的优化△

2017-09-21 06:58裴莉昕纪宝玉陈随清薛淑娟郝琼琼
中国现代中药 2017年4期
关键词:苯酚葛根容量瓶

裴莉昕,纪宝玉,陈随清,薛淑娟,郝琼琼

(河南中医药大学 药学院,河南 郑州 450046)

·中药工业·

葛根多糖提取工艺的优化△

裴莉昕,纪宝玉,陈随清*,薛淑娟,郝琼琼

(河南中医药大学 药学院,河南 郑州 450046)

目的:以葛根多糖为研究对象,提取率和含量为指标,进行综合分析,得出葛根多糖的最佳提取工艺。方法:通过正交试验分析影响葛根多糖提取的因素,采用加权分析法分析各因素的影响度。结果:应用最佳提取工艺,葛根多糖提取率可达15.38%,含量达12.88%。结论:该方法简单、可靠,应用广泛,可为葛根多糖的工业化生产提供依据。

葛根多糖;工艺优化;水提醇沉法;正交设计;加权分析法

葛根为豆科植物野葛PuerariaLobate(Willd.)ohwi的干燥根[1]。我国葛根资源极为丰富,除了西藏、新疆、青海外,全国各省均有分布[2]。从20世纪开始,随着细胞生物学研究和分子生物学研究的不断深入,人们陆续发现多糖具有多种生物活性[3],大量药理及临床研究证实,多糖具有降血糖、提高机体的免疫功能[4]、抗病毒、抗辐射[5]、抗衰老[6]、抗突变[7]、保鲜[8]、抗肿瘤、抗氧化活性等作用,而且对机体的副作用小。但目前人们主要集中对葛根资源及异黄酮类成分的研究,对葛根多糖研究甚少。笔者首次采用正交试验和加权分析法相结合,以多糖的提取率及含量为指标,对葛根多糖提取中水提和醇沉过程的各影响因素进行综合分析,得出葛根多糖的最佳提取工艺,为葛根多糖的工业化生产提供依据。

1 仪器与材料

1.1 仪器

电热恒温水浴锅(上海精宏试验设备有限公司);烘箱(上海南荣试验设备有限公司,型号:DGX-9053B);电子天平(常数市天量仪器有限责任公司);分析天平(赛多利斯科学仪器有限公司);UV-2600紫外分光光度计(日本岛津);电热套(金坛市医疗仪器厂KDM-1000B型调温电热套);旋转蒸发仪(上海爱朗仪器有限公司)。

1.2 试剂

石油醚(天津市富宇精细化工有限公司,沸程:60~90 ℃,分析纯);无水乙醇(天津市登科化学试剂有限公司,分析纯);丙酮(烟台市双双化工有限公司,分析纯);苯酚(天津市致远化学试剂有限公司,分析纯);浓硫酸(洛阳昊华化学试剂有限公司,分析纯);蒸馏水(实验室自制);无水葡萄糖(天津市凯通化学试剂有限公司,分析纯,批号:1911101)。

1.3 材料

葛根饮片购于亳州市张仲景中药饮片责任公司(批号:140501,产地:河南),经河南中医药大学生药学科陈随清教授鉴定为豆科植物野葛PuerariaLobate(Willd.)ohwi的干燥根,

2 方法与结果

2.1 葛根多糖的提取

称取50.00 g葛根粉末,置圆底烧瓶中,加石油醚250 mL,回流提取1 h,过滤,挥干滤渣溶媒,置烧瓶中。重复操作一次,加蒸馏水,回流提取,趁热过滤,滤液浓缩至50 mL,加入无水乙醇,在一定温度下,静置,过滤,沉淀物以无水乙醇、丙酮依次洗涤8次,每次5 mL,得到总多糖组分,60 ℃烘干,称重,计算粗多糖的提取率。

2.1.1 葛根多糖的含量测定 采用苯酚-硫酸法,含量以无水葡萄糖为对照品。

2.1.2 标准溶液的配制 精密称取无水葡萄糖0.002 50 g,置50 mL容量瓶中,加蒸馏水溶解并稀释至刻度,摇匀,冷藏备用。

2.1.3 5%的苯酚溶液的配制 精密称取苯酚5.000 3 g,置100 mL容量瓶中,加蒸馏水,摇匀备用。

2.1.4 检测波长的选择 精密吸取无水葡萄糖标准溶液2.0 mL,置10 mL具塞试管中,另取2.0 mL蒸馏水作为空白对照。两试管中分别加入1.0 mL苯酚溶液,混匀,再加入浓硫酸5.0 mL,摇匀后放置25 min,置沸水浴中加热15 min,取出置冷水浴中冷却后,在200~800 nm波长范围进行全波长扫描。扫描结果显示,无水葡萄糖在490 nm处有最大吸收,故可确定最大吸收波长为490 nm。

2.1.5 换算因素测定 精密称取葛根总多糖0.100 0 g,置100 mL容量瓶中,加水溶解并稀释至刻度,摇匀,作为储备液。精密量取储备液10.0 mL,置100 mL容量瓶中,稀释至刻度,摇匀,此为供试品溶液。精密量取供试品溶液2.0 mL,按标准曲线制备项下试剂的加入方法操作,测定吸光度,从标准曲线中求出供试品的浓度,并计算出2 mL供试液中所含的粗多糖的质量,按如下公式计算换算因数:

J=W/CD

(1)

W为实际总多糖量(mg),C为测得多糖液中总多糖(mg),D为稀释因素,经计算得出换算因素为J=2.19(n=3)。

2.1.6 供试品的制备及含量测定 取粉末50.00 g,按照2.1项下方法制备,精密称取制得的葛根粗多糖0.100 0 g,置100 mL容量瓶中,加蒸馏水稀释至刻度,摇匀,作为储备液。精密量取储备液10.0 mL,置100 mL容量瓶中,加蒸馏水稀释至刻度,摇匀,作为供试品溶液。精密量取2.0 mL供试品溶液,置10 mL试管中,加入1.0 mL 5%苯酚溶液,垂直快速加入浓硫酸5.0 mL,摇匀,放置25 min,置沸水浴加热15 min,取出放入冷水浴中冷却后,在最大吸收波长(490 nm)处测定吸光度,按下式计算样品中粗多糖的含量:

(2)

c为供试液葡萄糖浓度(mg·mL-1),F为供试品溶液的稀释因素,f为换算因素,M为供试品质量(mg)。

2.2 葛根多糖提取影响因素的正交试验

2.2.1 葛根多糖水提过程影响因素的正交试验 根据多糖水提过程中的影响因素,选取提取次数分别为1、2、3次,提取时间分别为1、2、3 h,料液比分别为1∶10、1∶15、1∶20 g·mL-1;药材粉碎程度直径分别为1.0、0.5、0.25 cm,醇沉过程的条件均设定乙醇浓度为80%,醇沉时间为24 h,醇沉温度为25 ℃,用以上四因素三水平进行正交试验L9(34),结果见表1。

由表1可知,水提过程中影响综合指标最大的因素为提取次数,最小的影响因素为料液比,四因素影响程度为提取次数>提取时间>粒度大小>料液比,所以最佳水提工艺为A2B3C1D3,即:水提时间为2 h,水提的次数为3次,水提料液比为1∶10 g·mL-1,药材的粉碎程度为0.25 cm。

2.2.2 葛根多糖醇沉过程影响因素的正交试验 选定最佳水提条件,根据葛根多糖醇沉过程影响因素,选取乙醇浓度为70%、80%、90%,沉淀时间为12、24、36 h,醇沉温度55、25、4~10 ℃;用以上三因素三水平进行正交试验L9(33),结果见表2。

表1 水提过程正交试验设计

表2 醇沉过程正交试验设计

由表2可知,在最佳的水提条件下,葛根多糖的醇沉过程中最大影响因素为乙醇浓度,最小影响因素为醇沉时间,各因素影响程度为乙醇浓度>醇沉温度>醇沉时间。确定最佳的醇沉方案:乙醇浓度为90%,醇沉温度为4~10 ℃,醇沉时间为36 h。

2.2.3 方法学考察 标准曲线的建立:精密吸取标准溶液0.5、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、7.0 mL分别置于50 mL容量瓶中,加溶剂稀释至刻度,分别吸取上述各浓度的标准溶液2.0 mL,置10 mL具塞试管中,另取2.0 mL蒸馏水作为空白对照。各管中分别加入1.0 mL苯酚溶液,混匀,再垂直快速加入浓硫酸5.0 mL,摇匀后放置25 min,置沸水浴中加热15 min,取出置冷水浴中冷却后,在最大吸收波长490 nm处测定吸光度。以葡萄糖对照品浓度为横坐标(X),以其吸光度为纵坐标(Y),得到标准曲线。得回归方程:Y=15.611X+0.130 2,r=0.999 6(n=7)。结果表明,无水葡萄糖在0.005~0.07 mg·mL-1线性关系良好。

稳定性考察:取同一供试品溶液2.0 mL,置具塞试管中,按2.1.6项下供试品的制备方法制备,每隔20 min测定一次吸光度,连续测定2 h。RSD为2.34%,表明2 h内多糖含量的测定结果稳定。

精密度考察:取同一供试品溶液,分别吸取2.0 mL置5个具塞试管中,按照2.1.6项下的方法测定吸光度。RSD为2.59%,实验仪器精密度良好。

重复性考察 取同一葛根粉末6份,在相同条件下制备供试品,按照2.1.6项下供试品的制备及含量测定操作。RSD为1.02%,实验具有良好的重复性。

加样回收试验:精密称取葛根样品6份,加入葛根多糖,按照2.1.6项下测定,计算加样回收率,结果显示,加样回收率为98.20%,RSD为1.43%,结果见表3。

表3 葛根多糖加样回收率试验结果(n=6)

2.3 最佳工艺的确定

结合水提和醇沉的影响因素,最终确定最佳提取工艺:水提时间为2 h,水提次数为3次,料液比为1∶10 g·mL-1,葛根粒度为0.25 cm,醇沉时乙醇浓度为90%,醇沉时间为36 h,醇沉温度为4~10 ℃。

3 讨论

3.1 测定方法

多糖的含量测定方法有很多,例如:色谱法、化学滴定法、光谱法等。色谱法具有定性能力比较差、分析能力受到检测器的限制、购买与使用费用偏高、需消耗有机溶剂等缺点;化学滴定法则步骤繁琐,重复性、准确度差,且实验操作的细微偏差对结果影响很大。因此,本实验采用光谱法-紫外-可见分光光度法。此法是近些年来应用于多糖的含量测定最为广泛的方法[9]。根据显色剂的不同,分为苯酚-硫酸法、蒽酮-硫酸法和地衣酚-盐(硫)酸法。本文采用苯酚-硫酸法,此法的优势在于能够进行大量样品的测定,并在实验时基本不受蛋白质存在的影响,而且产生的有色化合物在120 min内颜色稳定[10]。实验用苯酚溶液(未加硫酸)为现配溶液,每次用苯酚浓度一致,否则将会影响实验结果[11]。其含量测定依据的原理:多糖在浓硫酸的作用下,首先水解成单糖,此单糖迅速脱水生成糖醛的衍生物,然后再和苯酚迅速反应,缩合成有色的化合物,再用紫外分光光度计于最大吸收波长处测定其吸光度,通过标准曲线以及换算因子计算得出多糖含量[12-13]。

3.2 分析方法

在正交试验的基础上,利用加权分析法分别赋予多糖提取率和多糖含量0.4和0.6的权重,计算多糖的综合指标,从而分析比较各个影响因素的影响程度,得出利用水提醇沉法提取葛根多糖的最佳工艺,以便于葛根多糖制品的规模化生产。

3.3 结果分析

本实验系统分析了影响葛根多糖提取过程的因素,利用加权分析法将各个影响因素的影响程度进行分析,得到葛根多糖的最佳提取工艺。在最佳提取工艺下,葛根多糖提取率最大可达15.38%,含量达12.88%。实验结果可以为葛根多糖在其他领域的应用,如药品、保健品等方面提供参考,对于推动相关行业的发展,具有一定的理论价值和实际应用前景。

3.4 提取因素分析

水提过程中,水提次数对实验结果的影响非常明显,水提时间次之,料液比和粒度的影响相比较而言则不太明显。出现这个结果的原因,可能是料液比设定的最小比例已经足以完全提取出多糖,所以再加大料液比的比例对于结果的影响就不太明显。醇沉过程中,乙醇浓度对结果的影响非常明显,醇沉温度次之,影响最小的是醇沉时间,在实验中发现,葛根多糖醇沉时现象极为明显,表明对于醇沉时间的单因素分析也是非常有必要的。因此本实验后期可增加单因素分析。

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StudyonOptimizationofPeurariaeRadixPolysaccharidesExtraction

PEILixin,JIBaoyu,CHENSuiqing*,XUEShujuan,HAOQiongqiong

(SchoolofPharmacy,HenanUniversityofTraditionalChineseMedicine,Zhengzhou450046,China)

Objective:To optimize extraction process of polysaccharide from Radix Puerariae.Methods:The orthogonal experiment was applied to analyze the affecting factors of extraction of polysaccharide in Puerariae Radix,the weighted analysis method was used to analyze the influence degree of each factor.Results:The extraction rate of the polysaccharides was 15.38%,and the content was 12.88%.Conclusion:This method is simple,reliable,wide application,and provides the basis for the industrial production of polysaccharide from Radix Puerariae.

Puerarin polysaccharide;process optimization;water extraction and alcohol precipitation method;orthogonal design;weighted analysis method

中医药公共卫生专项资助项目(财[2011]76号);中医药行业科研专项资助项目(201207002);河南省教育厅科学技术研究重点项目(13A360557)

] 陈随清,教授,研究方向:中药品种整理及质量标准研究;Tel:(0371)65676686,E-mail:suiqingchen@sohu.com

10.13313/j.issn.1673-4890.2017.4.017

2016-09-20)

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