响应曲面法优化钩藤叶中钩藤碱和异钩藤碱的提取条件

2018-07-27 09:32徐佳瑜王晓红杨胜伟张智仙张明生
中南林业科技大学学报 2018年10期
关键词:叶中钩藤回归方程

徐佳瑜,王晓红,杨胜伟,吕 享,张智仙,张明生

(贵州大学 生命科学学院/国家喀斯特石漠化防治工程技术研究中心/山地植物资源保护与种质创新教育部重点实验室,贵州 贵阳 550025)

钩 藤Uncaria rhynchophylla (Miq.) Miq. ex Havil.为茜草科Rubiaceae钩藤属Uncaria多年生木质藤本植物[1],主要分布于广东、广西、四川、江西等地,其性微寒,味甘[2]。钩藤中含有多种生物碱[3-6],其中钩藤碱和异钩藤碱具有清热平肝、息风定惊、降血压、抗惊厥等功效[7-9],近年来受到广泛关注。目前对钩藤的研究主要集中在带钩茎枝,在中药中也常以钩藤带钩的干燥茎枝入药,叶则弃之不用。然而,已有研究报道钩藤叶中也含有钩藤碱和异钩藤碱等重要活性成分[10-12],这说明钩藤叶亦可作为药用资源加以利用。为此,本试验以钩藤叶为试验材料,选择干燥温度、超声提取时间和提取剂浓度3个因素,利用Design-Expert 8.0.6软件中Box-Behnken效应面法将各因素与响应值之间的函数关系进行多样性拟合,通过对回归方程及响应面的分析[13-15],优化钩藤碱和异钩藤碱的提取条件,并结合高效液相色谱法(HPLC)测定钩藤碱和异钩藤碱的含量[16-17]。本研究旨在为钩藤资源的充分利用提供理论和方法上的参考依据。

1 材料与方法

1.1 试剂与材料

甲醇(色谱纯,美国TEDIA);氨水(分析纯,成都金山化学药品有限公司);钩藤碱和异钩藤碱对照品,质量分数≥98%(中国食品药品检定研究院,钩藤碱批号:11927-201403,异钩藤批号:112028-261601);娃哈哈纯净水。

钩藤Uncaria rhynchophylla (Miq.) Miq. ex Havil.由昌昊金煌(贵州)中药有限公司提供,经贵州大学生命科学学院熊源新教授鉴定。试验时,先将钩藤的叶和钩茎置于恒温鼓风干燥箱中烘干至恒重,打粉,过20~40目筛,备用。

1.2 仪 器

Agilent 1260型HPLC仪(Agilent科技有限公司);电子分析天平(上海菁海仪器有限公司);JP-040S超声波清洗机(深圳市结盟清洗设备有限公司);SHZ-D(Ⅲ)循环水式多用真空泵(上海锦赋实验仪器设备有限公司);UPT-II-20L超纯水系统(成都优普电子产品有限公司);GZX-914MBE电热恒温鼓风干燥机(上海博讯实业有限公司医疗设备厂)等实验室常用仪器。

1.3 HPLC测定钩藤碱和异钩藤碱含量[17-18]

1.3.1 色谱条件

色谱柱:Agilent ZORBAX SB-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm);流动相:甲醇 -0.1% 氨水(70∶30,V/V)等度洗脱;流速:1.0 mL·min-1;柱温:30 ℃;检测波长:245 nm;进样量:10 μL。

1.3.2 钩藤叶中钩藤碱和异钩藤碱提取液制备

精密称取钩藤叶粉末1.0 g于100 mL具塞锥形瓶中,加入50 mL甲醇溶液,混匀后浸泡60 min,称重,放入4 ℃冰箱过夜,超声(频率为40 KHz),甲醇补足重量,摇匀,静置,取上清液用0.22 μm微孔有机滤膜过滤2次,作为供试品溶液。

1.3.3 标准品溶液制备

精密称取钩藤碱标准品5.00 mg和异钩藤碱标准品5.25 mg,分别置于25 mL的容量瓶中,加入70%甲醇溶液溶解并定容至刻度线,制成浓度分别为0.20 mg·mL-1钩藤碱标准品储备液和0.21 mg·mL-1异钩藤碱标准品储备液。

1.3.4 标准曲线的绘制

精密吸取 0.20 mg·mL-1钩藤碱和 0.21 mg·mL-1异钩藤碱标准品储备液各0.1、0.25、0.5、1、2、4、6、8 mL分别置于10 mL容量瓶中,分别用70%甲醇定容至刻度线,混匀。按“1.3.1”色谱条件进行测定,以标准品质量浓度(μg·mL-1)为横坐标(X),峰面积(mAU·s)为纵坐标(Y),分别绘制钩藤碱和异钩藤碱的标准曲线。

1.4 单因素试验

超声提取法提取钩藤叶中的钩藤碱和异钩藤碱,按照“1.3.2”项的方法制备钩藤碱和异钩藤碱的供试液,以“1.3.1”项条件下进行含量测定。试验中,将材料干燥温度、超声提取时间及甲醇浓度作为影响因素,固定其中2个因素,对另一因素进行单一因素试验,以提取率为评价指标。

1.5 响应曲面试验设计

在单因素试验的基础上,根据单因素试验结果,采用Box-Behnken模型,对试验进行设计,考察3个因素对提取效果的影响。

为保障被选派人员自身利益,河北省图书馆承诺被选派人员原有工资、津贴福利待遇标准不变,服务项目和培养任务结束后,对考核合格及优秀人员进行总结表彰。选派工作经历视同到艰苦地区工作经历,符合规定条件的,在工资、职务(职称)晋升、计算基层工作经历等方面,按现有倾斜政策执行。职称申报评审、岗位聘用时,同等条件下优先考虑选派人员。

1.6 样品测定

分别精密称取同一批次钩藤叶与钩茎粉末1.0 g于100 mL具塞锥形瓶中,按“1.3.2”项下的方法制备叶与钩茎的钩藤碱与异钩藤碱的供试液,以“1.3.1”项下的方法进行含量测定。重复3次。

2 结果与分析

2.1 线性关系

以标准品质量浓度(μg·mL-1)为横坐标(X),峰面积(mAU·s)为纵坐标(Y),做回归方程:钩藤碱的标准曲线回归方程为Y1=25.869X+18.754,R2=0.999 8;异钩藤碱的标准曲线回归方程为Y2=25.486X+32.270,R2=0.999 5。钩藤碱浓度在2~160 μg·mL-1范围内、异钩藤碱浓度在2.1~ 168.0 μg·mL-1范围内的线性关系较好。

2.2 单因素试验结果

2.2.1 干燥温度对提取率的影响

加入70%甲醇、超声处理60 min,考查材料干燥温度分别为45、50、55、60、65℃处理时对钩藤碱和异钩藤碱提取率的影响。结果钩藤碱的提取率分别为100.81、118.29、142.25、129.79、114.00 μg·g-1,异钩藤碱的提取率分别为 346.88、376.60、426.86、403.25、322.53 μg·g-1( 图 1)。随着对钩藤叶干燥温度的升高,钩藤碱和异钩藤碱的提取率逐渐升高,当干燥温度为55℃时,钩藤碱和异钩藤碱的提取率达到最高,随后均逐渐降低。可能是由于高温下钩藤碱和异钩藤碱不稳定,使其部分降解,从而导致提取率逐渐降低。

图1 干燥温度对钩藤碱和异钩藤碱提取率的影响Fig. 1 Effects of drying temperature on extraction yield of rhynchophylline and isorhynchophylline

2.2.2 提取剂浓度对提取率的影响

在50 ℃下干燥材料、超声处理60 min,考查甲醇的浓度分别为60%、65%、70%、75%、80%提取时对钩藤碱和异钩藤碱提取率的影响。结果钩藤碱的提取率分别为79.73、81.14、90.25、72.99、49.14 μg·g-1,异钩藤碱的提取率分别为304.88、294.50、313.41、311.76、283.43 μg·g-1(图2)。随着甲醇浓度的增加,钩藤碱的提取率逐渐升高,异钩藤碱的提取率先下降后逐渐升高,当甲醇浓度为70%时,此时钩藤碱和异钩藤碱的溶出量达到最大,钩藤碱和异钩藤碱的提取率达到最高。

图2 甲醇浓度对钩藤碱和异钩藤碱提取率的影响Fig. 2 Effects of methanol concentration on extractionyield of rhynchophylline and isorhynchophylline

2.2.3 超声提取时间对提取率的影响

在50 ℃下干燥材料、加入70%的甲醇,考查超声处理时间分别为30、40、50、60、70 min时对钩藤碱和异钩藤碱提取率的影响。结果钩藤碱的提取率分别为 86.33、89.34、102.10、99.04、92.51 μg·g-1,异钩藤碱的提取率分别为 307.91、304.35、318.04、312.43、298.50 μg·g-1( 图 3)。随着超声处理时间的增加,钩藤碱的提取率逐渐升高,异钩藤碱的提取率先下降后逐渐升高;当超声处理50 min时,钩藤碱和异钩藤碱的提取率都达到最高,当继续超声提取时,可能由于仪器长时间工作产生的热能使提取温度缓慢升高,导致钩藤碱和异钩藤碱发生了降解或是异构化。

图3 超声提取时间对钩藤碱和异钩藤碱提取率的影响Fig. 3 Effects of ultrasound time on extraction yield of rhynchophylline and isorhynchophylline

2.3 响应曲面法优化试验结果

根据单因素试验的结果,采用Box-Behnken模型,将甲醇浓度(A)、超声提取时间(B)和材料干燥温度(C)作为考查因素,设置3因素3水平试验,每个水平用代码-1、0、+1表示,共组合成17组试验。试验因素与水平见表1,试验设计与结果见表2。

表1 因素与水平Table 1 Factors and levels

表2 Box-Behnken试验设计及结果Table 2 Design and results of Box-Behnken test design

运用Design-expert 8.0.6软件对试验结果进行多元回归拟合分析,得到钩藤碱提取率的二次多项回归模型为:D1=127.58+2.63A+5.31B-0.73C-1.58AB+0.51AC+2.22BC-1.71A2+0.53B2-12.68C2;异钩藤碱提取率的二次多项回归模型为:D2=411.95+8.37A+22.78B+3.89C-7.51AB-1.88AC-12.08BC+3.02A2-5.48B2-51.04C2。

由表3可知,钩藤碱提取的回归模型F值=21.27,P值=0.000 3<0.001,表明二元多次回归模型极显著;失拟F值=2.02,失拟项P值=0.253 4>0.05,模拟失拟不显著;校准系数R2=0.964 7,R2adj=0.919 4>0.8,CV%=1.9,说明此模型能解释96.47%的响应值变化,该模型拟合程度较好。方差分析表明,模型中一次项超声时间(B)极显著,甲醇浓度(A)显著,烘干温度(C)不显著,影响顺序B>A>C;二次项C2极显著,A2、B2不显著;因素间交互作用均不显著。试验因素间交互作用的三维空间图见图4~图6。

表3 钩藤碱回归方程的方差分析†Table 3 Variance analysis for the created regression model of rhynchophylline

由表4可知,异钩藤碱提取的回归模型F值=26.20,P值=0.000 1<0.001,表明二元多次回归模型极其显著;失拟F值=4.86,失拟项P值= 0.080 4>0.05,模拟失拟不显著;校准系数R2=0.9712,R2adj=0.934 7,CV%=2.19,说明此模型能解释97.12%的响应值变化,该模型拟合程度较好。方差分析表明,模型中一次项超声时间(B)极显著,甲醇浓度(A)显著,烘干温度(C)不显著,影响顺序B>A>C;二次项C2极显著,A2、B2不显著;从交互项作用来看,超声提取时间和材料烘干温度间的交互作用提取效果显著。试验因素间交互作用的三维空间图见图7~图9。

表4 异钩藤碱回归方程的方差分析表Table 4 Analysis of variances for the created regression model of isorhynchophylline

图4 甲醇浓度和超声提取时间交互作用对钩藤碱提取率影响的响应面Fig. 4 Response surface curve of the interaction between methanol concentration and ultrasound time to rhynchophylline

图5 甲醇浓度和干燥温度交互作用对钩藤碱提取率影响的响应面Fig. 5 Response surface curve of the interaction between methanol concentration and drying temperature to rhynchophylline

选取交互作用影响显著的响应面曲面(图7)进行分析,当烘干温度不变时,异钩藤碱的提取率随着超声时间的增加而逐渐升高,在超声时间在60 min时达到最大,说明超声时间越长提取率越高;当超声时间不变时,随着干燥温度的逐渐升高,异钩藤碱的提取率在55 ℃时达到最大,当干燥温度进一步升高,提取率逐渐降低,说明高温不利于对异钩藤碱的提取。

2.4 验证试验

根据方程拟合出的最佳提取条件为:当叶片烘干温度54.95 ℃时,甲醇浓度73.35%和超声时间60 min,钩藤碱的理论预测提取率为 133.34 μg·g-1,异钩藤碱的理论预测提取率为429.75 μg·g-1。对理论值进行校正,烘干温度55 ℃,甲醇浓度73%,超声提取60 min,重复试验3次,实际测得钩藤碱提取率的平均值为130.80 μg·g-1,异钩藤碱提取率的平均值为425.60 μg·g-1,与理论值较吻合,说明该模型可以较好的优化钩藤叶中钩藤碱与异钩藤碱的提取条件。

图6 超声提取时间和干燥温度交互作用对钩藤碱提取率影响的响应面Fig. 6 Response surface curve of the interaction between ultrasound time and drying temperature to rhynchophylline

图7 超声时间和烘干温度交互作用对异钩藤碱提取率影响的响应面Fig. 7 Response surface curve of the interaction between ultrasound time and drying temperature to isorhynchophylline

2.5 样品测定结果

由表5可知,钩藤叶中异钩藤碱的含量高于钩茎中的含量,而钩茎中钩藤碱的含量高于叶中的含量。钩藤常以带钩的茎枝入药,经研究发现钩藤叶中也含有大量的钩藤碱与异钩藤碱,所以钩藤叶具有较大的开发利用价值。

3 讨 论

图8 甲醇浓度和超声提取时间交互作用对异钩藤碱提取率影响的响应面Fig. 8 Response surface curve of the interaction between methanol concentration and ultrasound time to isorhynchophylline

图9 甲醇浓度和烘干温度交互作用对异钩藤碱提取率影响的响应面Fig. 9 Response surface curve of the interaction between methanol concentration and drying temperature to isorhynchophylline

表5 钩藤叶与钩茎中钩藤碱与异钩藤碱的含量测定Table 5 The content of rhynchophylline and isorhynchophylline in leaves and hooks of U. rhynchophylla

生物碱类化合物是许多中草药及药用植物的有效成分[19],钩藤叶中生物碱的含量和种类与钩中相似[10]。在研究中也发现叶中含有较高的钩藤碱与异钩藤碱成分,并且异钩藤碱含量高于药用部位钩茎中的含量。钩藤作为药材主要以其带钩的茎枝入药,其余部分则作为废料被遗弃。由于钩藤具有良好的降压作用,人们对其的需求量日益增大,而钩的资源非常有限,叶资源却很丰富,每年均可采收,所以将叶弃之不用则造成了很大的资源浪费,因此钩藤叶将是一种值得充分开发利用的资源[11-12]。

研究表明,钩藤中吲哚类生物碱不稳定,高温对钩藤碱和异钩藤碱的破坏极大[20-23]。本试验对材料干燥温度做了探究,结合前期试验研究,发现将叶阴干处理后,几乎很难提出钩藤碱和异钩藤碱,而烘干叶时随着温度的升高,钩藤碱和异钩藤碱含量都呈先上升后下降的趋势,在55 ℃时达到最大,因此可推测钩藤碱和异钩藤碱在55 ℃以下相对稳定。

通过响应曲面法所得到的模型,钩藤叶中钩藤碱和异钩藤碱的优化提取条件为:叶片烘干温度为54.95 ℃时,甲醇浓度73.35%和超声时间60 min,钩藤碱和异钩藤碱能达到的最高提取率为 133.34 μg·g-1和 429.75 μg·g-1。为了试验的方便性,将叶片烘干温度修改为55 ℃,提取条件修改为:甲醇浓度73%和超声提取60 min,藤碱和异钩藤碱的提取率分别为130.80 μg·g-1和425.60 μg·g-1,与模型的预测值相接近,说明此方法得到的最佳提取条件是可靠的。

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