油菜素内酯诱导小白菜初生根不对称生长

2019-06-11 09:40曹璐付影于旭东蔡泽坪罗佳佳汤竹
热带作物学报 2019年3期
关键词:卷曲内酯曲率

曹璐 付影 于旭东 蔡泽坪 罗佳佳 汤竹

摘  要  油菜素内酯(Brassinolide,BL)能诱导单子叶植物初生根发生不对称生长,而在双子叶植物中还未见报道。本试验通过外源施加不同浓度2,4-表油菜素内酯(2,4-Epibrassinolide,2,4-eBL)观察小白菜(Brassica chinensis L.)初生根生长状况。结果表明:2,4-eBL能诱导小白菜初生根发生不对称生长形成卷曲。随着2,4-eBL浓度的升高,根卷曲比例和曲率逐漸增大,同时向地性逐渐降低。试验发现外源施加2,4-eBL可诱导双子叶植物根不对称生长的现象,为研究油菜素甾醇(Brassinosteroids,BRs)在根生长发育中的作用提供新途径。

关键词  2,4-表油菜素内酯;小白菜;初生根;不对称生长;向地性

中图分类号  Q945.32     文献标识码  A

1979年Grove等[1]首次从欧洲油菜(Brassica napus L.)花粉中分离出油菜素内酯(Brassinolide, BL),至今已分离鉴定出70多种多羟基甾醇衍生物,统称油菜素甾醇(Brassinosteroids, BRs)[2]。在所有BRs中BL的生物活性最高[3-4]。BRs在根中合成并调控根的生长发育,影响根的伸长、不定根发生、侧根发育、根毛形成、根尖重力反应等[5-9]。

BRs在植物体各器官中的分布存在显著差异,尤其在根中的含量甚微,从而导致其在根中的发现晚于下胚轴及植物体的其它部位。与此对应的是,根对BRs的反应要比植物体的其他部位敏感得多[10]。BRs最早的分离提纯来自于玉米(Zea mays),随后相继在拟南芥(Arabidopsis thaliana)、豌豆(Pisum sativum)和西红柿(Lycopersicon esculentum)的根中被发现[11-13]。研究证明BRs在调控根端分生组织(root apical meristem,RAM)分化以及根伸长的过程中扮演着重要角色[14]。在拟南芥中,BRs在极低浓度下(≤0.1 nmol/L)促进根的伸长[10],而在高浓度下(≥10 nmol/L)抑制[15-17]。BRs合成或信号受阻均会导致RAM变小和根长缩短[18]。BRs还在影响根的向地性上起关键作用,Soochul等[19]和Kim等[20]发现BRs可以增加玉米、拟南芥等不同物种主根的向地性曲率。在玉米中,当BL浓度为107 mol/L时向地性角度达到最大值;而在拟南芥中,当BL浓度为10?10~10?7 mol/L时,根向地性逐渐增强。

双子叶和单子叶植物根存在一定区别。其中,大多双子叶植物根为定根、根系为直根系,而单子叶植物根为不定根、根系为须根系[21]。BRs能够诱导单子叶须根系植物水稻(Oryza sativa)幼苗初生根发生不对称生长形成卷曲(coiling)和波浪形弯曲(wave)[22-24]。然而,关于BRs诱导双子叶直根系植物初生根不对称生长的研究还未见报道。本研究用2,4-表油菜素内酯(2,4- Epibrassinolide,2,4-eBL)处理双子叶直根系植物小白菜(Brassica chinensis L.),探究2,4-eBL调控小白菜根不对称生长、减弱初生根向地性的现象,为植物激素对根生长的研究提供新的见解。

1  材料与方法

1.1  材料

小白菜(Brassica chinensis L.)种子购自蔬菜物资公司,商品名称为绿领四月慢。2,4-eBL(code E-1641)购自sigma公司,用75%乙醇溶解并配制成1 mmol/L母液。

1.2  方法

1.2.1  种子灭菌  选择饱满且不开裂的种子,自来水浸泡30 min,在超净工作台上依次用75%乙醇和0.1%升汞分别浸泡30 s和7 min,无菌水浸洗5遍。

1.2.2  初生根向地性角度的测量  在超净工作台上,将灭好菌的小白菜种子接入2,4-eBL浓度梯度分别为0、2×10?11、2×10?9、2×10?7 mol/L的MS固体培养基中。每只试管接种1粒种子,重复10次,并于第3天测量初生根的向地性角度。

1.2.3  初生根主根长、曲率和卷曲比例的测量  在超净工作台上,将灭好菌的小白菜种子接入2,4-eBL浓度梯度分别为0、2×10?13、2×10?12、2×10?11、2×10?10、2×10?9、2×10?8、2×10?7 mol/L的MS固体培养基中。每瓶接种10粒种子,重复6次。第8 d测量主根长、曲率和卷曲比例。

1.2.4  培养条件  以上均为光照和黑暗培养,光照培养条件为:温度(25±2)℃,光强1000 lx,光周期为光照16 h/d,黑暗8 h/d;暗培养条件为:温度(25±2)℃,黑暗24 h/d。

1.3  数据分析

根长、曲率和向地性角度均采用Image J v1.50i软件(https://imagej.nih.gov/ij/index.html)测量。实验数据的统计和分析均采用SPSS 19.0统计软件,采用LSD检验和Duncan法进行数据差异显著性多重比较。

2  结果与分析

2.1  外源施加2,4-eBL对小白菜初生根向地性的影响

无论是光照培养还是暗培养,2,4-eBL对小白菜初生根向地性的作用2~3 d便能表现出来。浓度大于2×10?11 mol/L时,随着2,4-eBL浓度的升高,根尖向地性角度减小(图1A~图1H)。光培养下,2,4-eBL浓度为0时,根尖向地性角度为(70.9±10.4);浓度为2×10?11 mol/L时,根尖向地性角度与对照相比有显著差异;浓度为2×10?9 mol/L时,根尖向地性角度与对照相比有极显著差异;浓度为2×10?7 mol/L时,根尖向地性角度是对照的38.6%,有极显著差异(图1I)。暗培养下,2,4-eBL浓度为0时,根尖向地性角度为(74.4±10.6)。浓度为2×10?11 mol/L及以上时,根尖向地性角度与对照相比有极显著差异;2,4-eBL浓度为2×10?7 mol/L时,根尖向地性角度是对照的43.5%(图1J)。可见,2,4-eBL对小白菜初生根向地性有减弱作用。

2.2  外源施加2,4-eBL对小白菜初生根不对称生长的影响

无论是光照培养还是暗培养,外源施加2,4-eBL能诱导小白菜初生根不对称生长形成卷曲。光培养下,2,4-eBL浓度为0时,初生根卷曲的曲率是(0.17±0.03)mm1,卷曲比例为(3.3± 2.9)%;当浓度为2×1013 mol/L时,卷曲的比例为

A~D:光照培养3 d(A~D对应2,4-eBL浓度分别为0、2×10?11、2×10?9、2×10?7 mol/L);E~H:黑暗培养3 d(E~H对应2,4-eBL浓度分别为0、2×10?11、2×10?9、2×10?7 mol/L);I:光培养3 d初生根向地性角度;J:暗培养3 d初生根向地性角度;

比例尺:1 cm。*表示与对照相比存在显著差异(p<0.05);**表示与对照相比存在极显著差异(p<0.01)。

(12.97±3.23)%,是对照的3.89倍,具有极显著差异(p<0.01)。对于初生根卷曲曲率而言,当浓度小于2×10?10 mol/L时,初生根卷曲曲率随着2,4-eBL浓度的升高缓慢上升,当浓度大于2×10?10 mol/L时,初生根卷曲曲率随着2,4-eBL浓度的升高迅速上升。对于初生根卷曲比例而言,当浓度小于2×10?9 mol/L时,初生根卷曲比例随着2,4-eBL浓度的升高缓慢上升,当浓度大于2×10?9 mol/L时,初生根卷曲比例随着2,4-eBL浓度的升高迅速上升;当浓度为2×10?7 mol/L时卷曲的曲率和比例达到最大值,分别为(0.65± 0.06)mm1和(95±5)%,是对照的3.82和28.53倍(图2A~图2F、图3C、图3E)。暗培养下,2,4-eBL浓度为0时,初生根卷曲的曲率是(0.20±0.04)mm1,卷曲比例为(3.7±3.2)%;2,4-eBL浓度为2×10?10 mol/L时,根卷曲的曲率为(0.24± 0.04)mm1,是对照的1.2倍,差异显著(p<0.05);而卷曲比例为(24.57±1.87)%,是对照的6.59倍,差异极显著;当浓度小于2×10?9 mol/L时,初生根卷曲曲率和卷曲比例随着2,4-eBL浓度的升高缓慢上升,当浓度大于2×10?9 mol/L时,初生根卷曲曲率和卷曲比例随着2,4-eBL浓度的升高迅速上升;浓度为2×10?7 mol/L时卷曲的曲率和比例达到最大值,分别为(0.76±0.14)mm1和(98.23± 3.01)%,是对照的3.80和26.34倍,有极显著差异(图2G~图2L、图3D、图3F)。

2,4-eBL对小白菜幼苗初生根长度也具有一定的影响。光培养下,2,4-eBL浓度为0时,初生根长为(55.2±17.9)mm;当浓度为2×10?7 mol/L时,初生根长为(23.63±11.39)mm,是对照的42.8%,根长明显缩短,差异极显著(图3A)。暗培养下,2,4-eBL浓度为0时,初生根长为(67.1±17.7)mm;2,4-eBL浓度为2×10?13 mol/L时,初生根长为(94.26±27.82)mm,是对照的1.4倍,差异显著;浓度为2×10?12 mol/L时,初生根长为(87.35± 15.13)mm,是对照的1.3倍,差异极显著;浓度为2×10?8~2×10?7 mol/L时,初生根长分别为(50.47±7.57)mm和(37.86±11.68)mm,是对照的75.2%和56.4%,差异均极显著(图3B)。浓度相同的2,4-eBL暗培养下初生根长普遍大于光培养(图3A、图3B)。可见,2,4-eBL可诱导小白菜初生根发生不对称生长以及能影响初生根的根长。

3  讨论

BRs能够影响植物的光形态建成[25]。为了探究光照是否参与了BRs导致的根不对称生长,本试验通过外源添加不同浓度2,4-eBL,分别在光暗2种培养条件下,观察小白菜初生根生长状况。

当2,4-eBL浓度为0时,小白菜主根也会出现极少量(<4%)卷曲现象。Mullen等[26]发现重力刺激和根的接触刺激可以使拟南芥初生根发生卷曲或弯曲现象。Jiang等[27]发现水稻根接触到培养瓶的底部时,主根会发生卷曲,如果培养瓶中

A~F: 光照培养8 d(A~F所对应的2,4-eBL浓度分别为0、2×10?11、2×10?10、2×10?9、2×10?8、2×10?7 mol/L);G~L:

黑暗培养8 d(G~L所对应的2,4-eBL浓度分别为0、2×10?11、2×10?10、2×10?9、2×10?8、2×10?7 mol/L)。比例尺:1 cm。

的介质足够深以致主根不能接触瓶底,主根不会发生卷曲。杨文等[23]发现接触刺激可使2,4-eBL处理的水稻初生根发生不对称生长的比例显著上升。由此可见,接触刺激对根的不对称生长具重要作用。

BRs能使单子叶植物初生根发生不对称生长,杨文等[22]发现2,4-eBL能够使水稻初生根发生不对称生长形成卷曲和波浪形弯曲,当2,4-eBL浓度为2×10?13~2×10?9 mol/L时根发生不对称生长的比例与对照无显著差异,当2,4-eBL浓度达到2×10?8~2×10?7 mol/L根不对称生长比例开始增大,且均与对照相比有极显著差异。而本文也研究了浓度分别为0、2×10?13、2×10?12、2×10?11、2×10?10、2×10?9、2×10?8、2×10?7 mol/L的2,4-eBL对小白菜初生根不对称生长的影响,发现浓度越高,小白菜初生根不对称生长越明显。可见BRs不论是对单子叶植物还是双子叶植物,都能够诱导其根发生不对称生长。

除BRs之外,乙烯(Ethylene, Eth)和茉莉酸(Jasmonic acid, JA)也能够诱导植物根发生不对称生长。Woods等[28]发现外源施加不同浓度的Eth可以诱导番茄幼苗根发生卷曲,卷曲程度取决于Eth浓度,并且添加银离子能阻止此现象的发生。Cai等[24]发现2,4-eBL诱导水稻初生根不对称生长的作用能被Eth抑制剂氨基氧乙酸(amino oxyacetic acid, AOA)、CoCl2和银离子抑制,从而证明Eth可参与油菜素内酯调控的水稻初生根不对称生长。Jiang等[27]报道自然生长的野生型水稻初生根不会发生卷曲,当外源施加0.1 μmol/L JA时,可诱导5%的初生根卷曲,0.5 μmol/L JA能诱导10%的水稻根发生卷曲。然而BRs在诱导双子叶植物根发生不对称生长的过程与Eth和JA是否存在联系还有待进一步研究。

BRs還能影响初生根的向地性反应以及根长。Kim等[29]发现BRs在功能上与生长素(Auxin, IAA)结合调控植物根部向重力性。不同浓度的BL对玉米根的向地性影响不同,BL浓度范围在10?9~10?5 mol/L时,会增强根的向地性。在浓度为10?7 mol/L时向地性角度达到最大值[19]。而本文研究了浓度为0、2×10?11、2×10?9、2×10?7 mol/L 2,4-eBL对小白菜初生根向地性反应的影响,结果表明在这些浓度下,BRs对向地性反应有减弱作用。且2,4-eBL浓度为2×10?11、2×10?9、2×10?7 mol/L时,小白菜初生根的向地性角度逐渐减小,而不对称生长的程度逐渐增大。根的向地性与不对称生长之间有何种联系还不得而知。

参考文献

Grove M D, Spencer G F, Rohwedder W K, et al. Brassinolide, a plant growth-promoting steroid isolated from Brassica napus pollen[J]. Nature, 1979, 281(5728): 216-217.

Oklestkova J, Rárová L, Kvasnica M, et al. Brassinosteroids: synthesis and biological activities[J]. Phytochemistry Reviews, 2015, 14(6): 1053-1072.

Fujioka S, Yokota T. Biosynthesis and metabolism of brassinosteroids[J]. Physiologia Plantarum, 1997, 100(3): 137- 164.

Russinova E. Plants grow on Brassinosteroids[J]. Current Opinion in Plant Biology, 2011, 14(5): 530.

徐  曼, 齐天明, 黄立涛, 等. 油菜素内酯对高羊茅种苗萌发生长的影响[J]. 生物化工, 2017, 3(4): 17-19.

刘  灵, 李海航, 杨丽霞, 等. 油菜素内酯促进绿豆下胚轴不定根发生研究[J]. 科技导报, 2007, 25(5): 56-60.

Gupta A, Singh M, Laxmi A. Interaction between glucose and brassinosteroid during the regulation of lateral root development in Arabidopsis[J]. Plant Physiology, 2015, 168(1): 307-320.

Wei Z, Li J. Brassinosteroids regulate root growth, Development, and Symbiosis[J]. Molecular Plant, 2016, 9(1): 86.

Li L, Xu J, Xu Z H, et al. Brassinosteroids stimulate plant tropisms through modulation of polar auxin transport in Brassica and Arabidopsis[J]. Plant Cell, 2005, 17(10): 2738.

Müssig C, Shin G H, Altmann T. Brassinosteroids promote root growth in Arabidopsis[J]. Plant Physiology, 2003, 133(3): 1261-1271.

Yokota T, Sato T, Takeuchi Y, et al. Roots and shoots of tomato produce 6-deoxo-28-norcathasterone, 6-deoxo-28- nort yph asterol and 6-deoxo-28-norcastasterone, possible precursors of 28-norcastasterone[J]. Phytochemistry, 2001, 58(2): 233-238.

Nomura T, Bishop G J, Koncz C, et al. Regulation of transcript levels of the Arabidopsis cytochrome P450 genes involved in brassinosteroid biosynthesis[J]. Plant Physiology, 2002, 130(1): 504-513.

Shimada Y, Goda H, Nakamura A, et al. Organ-specific expression of brassinosteroid-biosynthetic genes and distribution of endogenous brassinosteroids in Arabidopsis[J]. Plant Physiology, 2003, 131(1): 287-297.

Vragovi? K, Sela A, Friedlander-Shani L, et al. Translatome analyses capture of opposing tissue-specific brassinosteroid signals orchestrating root meristem differentiation[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2015, 112(3): 923-928.

Roddick J G, Guan M. Brassinosteroids and root development[C]//ACS Symposium Series, 1991(474): 231-245.

Sasse J M. Recent progress in brassinosteroid research[J]. Physiologia Plantarum, 1997, 100(3): 696-701.

Konishi H, Komatsu S. A proteomics approach to investigating promotive effects of brassinolide on lamina inclination and root growth in rice seedlings[J]. Biological & Pharmaceutical Bulletin, 2003, 26(4): 401-408.

Hacham Y, Holland N, Butterfield C, et al. Brassinosteroid perception in the epidermis controls root meristem size[J]. Development, 2011, 138(5): 839-848.

Soochul S K, Eunjoo L, Woosook C, et al. Involvement of brassinosteroids in the gravitropic response of primary root of maize[J]. Plant Physiology, 2000, 123(3): 997-1004.

Kim T W, Lee S M, Joo S H, et al. Elongation and gravitropic responses of Arabidopsis roots are regulated by brassinolide and IAA[J]. Plant Cell & Environment, 2007, 30(6): 679-689.

李焜章, 李學真. 双子叶植物和单子叶植物的基本区别[J]. 生物学通报, 1988(1): 18-19.

杨  文, 蔡泽坪, 于旭东, 等. 生长素抑制油菜素内酯导致的水稻根不对称生长[J]. 热带作物学报, 2018, 39(7): 1304-1310.

杨  文, 于旭东, 蔡泽坪, 等. 接触刺激在水稻根不对称生长中的作用研究[J]. 热带作物学报, 2018, 39(9): 18-23.

Cai Z P, Yang W, Zhang H Y, et al. Ethylene participates in the brassinolide-regulated asymmetric growth of O. sativa root[J]. South African Journal of Botany, 2018(119): 86-93.

Karnachuk R A, Golovatskaya I F, Efimova M V, et al. The effect of epibrassinolide on Arabidopsis seedling morphogenesis and hormonal balance under green light[J]. Russian Journal of Plant Physiology, 2002, 49(4): 530-533.

Mullen J L, Turk E, Johnson K, et al. Root-growth behavior of the Arabidopsis mutant rgr1. Roles of gravitropism and circumnutation in the waving / coiling phenomenon[J]. Plant Physiology, 1998, 118(4): 1139-1145.

Jiang J, Li J, Xu Y, et al. RNAi knockdown of Oryza sativa root meander curling gene led to altered root development and coiling which were mediated by jasmonic acid signalling in rice[J]. Plant Cell & Environment, 2007, 30(6): 690-699.

Woods S L, Roberts J A, Taylor I B. Ethylene-induced root coiling in tomato seedlings[J]. Plant Growth Regulation, 1984, 2(3): 217-225.

Kim S K, Chang S C, Lee E J, et al. Involvement of brassinosteroids in the gravitropic response of primary root of maize [J]. Plant Physiology, 2000, 123(3): 997-1004.

猜你喜欢
卷曲内酯曲率
肠胃舒胶囊中的木香烃内酯的含量测定方法优化
对科研工作要有锲而不舍的精神
方便面为什么是卷的
细胞自噬对岩大戟内酯B诱导的白血病细胞HL—60凋亡的影响
不同曲率牛顿环条纹干涉级次的选取
各类曲线弯曲程度的探究
0.01%芸苔素内酯水剂对水稻生长、产量和品质的影响
夜读
一类广义平均曲率Liénard方程周期解存在性与唯一性(英文)