RNA干扰研究进展

2019-09-10 14:06王兰兰
学习与科普 2019年22期

王兰兰

摘 要:RNA干扰(RNA interference, RNAi)是正常生物体内抑制特定基因表达的一种现象,通过双链RNA的介导特异性降解相应序列的mRNA,从而导致转录后水平的基因沉默。RNAi发生过程主要分为3个阶段:起始阶段、扩增阶段、效应阶段。其在抵抗病毒感染、抑制转座子活动、调控内源性基因表达等方面发挥重要作用。本文就RNAi的分子机制、作用特点及其应用研究方面的进展做相关介绍。

关键词:RNA干涉;基因沉默;双链RNA

RNA 干扰(RNA interference,RNAi) 是指与靶基因序列同源的双链RNA( dsRNA) 所诱导的转录后基因沉默现象,是真核生物抵御病毒入侵、抑制转座子活动、调控基因表达的监控机制。基因的表达具有选择性,我们发现生物体内存在一套RNA 监视系统,能通过多种途径产生异常dsRNA,诱发RNAi,激活抑制基因,控制活跃基因,从而参与基因选择性表达。目前RNAi 技术因其操作简单、特异性强、高效性等特点,被廣泛应用于植物的抗病毒研究、药物靶基因的筛选、肿瘤治疗等领域[1]。现对RNAi的研究进展做综述。

1 RNA干涉的的发现

RNAi最早是在线虫C.elegans上发现的,人们发现水蛭、锥体虫、涡虫、果蝇等无脊椎动物RNAi都非常有效。开始,较长双链RNA只能引起少数胚胎细胞(如斑马鱼和小鼠胚胎)的RNAi现象。后来人工合成的21nt长度的RNA二合体在培养的哺乳动物细胞成功进行了RNAi。最近,利用载体表达的shRNA在许多培养的人源,猴源和鼠源的哺乳动物细胞的RNAi实验取得了成功。RNAi广泛存在于是生物界的现象。

2  RNA干涉的分子机制及作用特点

2.1 RNA干涉的分子机制

虽然遗传学和生物化学的方法都已用于探索RNA干涉的机制,但其真正的机理尚未明了。目前认为其可能机制可分为三步:

第一步:dsRNA的形成。dsRNA是诱导细胞RNAi的关键组分,外源DNA、RNA序列均可激发细胞产生相应的dsRNA,但产生的方式不同。RNA病毒在病毒或细胞中RNA依赖性RNA聚合酶的催化下,合成病毒的RNA序列互补链,并与之结合形成dsRNA;细胞通过“通读转录’,转座子的反向重复序列,直接产生双链RNA[2]。

第二步:siRNA的形成。形成的dsRNA要在细胞中大量扩增,当其在细胞中达到一定量的时候,会被一种特异的核酸内切酶识别并与之结合形成酶-dsRNA复合体。此后,在ATP的参与下,细胞中存在的另一种复合体—RNA诱导的沉默复合体,利用结合在其上的核酸内切酶活性切割靶mRNA分子中与dsRNA反义链互补的区域,形成了21-23个核昔酸的dsRNA,小片段称之为短干涉RNA[3]。

第三步:RNAi的形成。SiRNA还可作为一种特殊的引物,在RdRP酶的作用下以把mRNA为模板合成dsRNA分子,这些dsNRA分子又可被RISC切割形成新的siRNA,新的siRNA又可进人上述循环,这种过程称之为随机降解性聚合酶链式反应。新生的dsRNA反复合成和降解,不断产生新的siNRA,从而使靶mRNA渐进性减少,导致目的基因沉默,呈现RNiA现象。

2.2 RNA干涉的作用特点

RNAi途径主要存在于细胞浆中,与反义核酸,核酶相比,RNAi具有以下特点。①特异性。siRNA是严格按照碱基配对法则与靶mRNA结合的,故只引起同源mRNA的降解。②遗传性。dsRNA分子可扩散至生物体各个细胞,干扰效应可遗传给后代,研究表明,通过注射或者浸泡siRNA,在二代线虫中仍可观察到对靶基因的抑制作用。③位置效应。研究表明只有针对编码区的dsRNA才产生干扰效应,对内含子区域的dsRNA不产生干扰效应[4]。

3 RNA干涉的应用

3.1用于基因治疗

RNAi的作用具有高效率和高特异性的特点,它能使目标蛋白的mRNA发生特异性的降解。目前,人们已经证明在培养的哺乳动物细胞中,RNAi可用于抗病毒和抗肿瘤等的基因治疗Wilda等[5],在K562细胞系用针对融合基因bcr-abl的dsRNA可以明显引起细胞凋亡。随着RNAi被成功应用于哺乳动物细胞,用于人类疾病的治疗已为期不远。

3.2新药物的研究与开发

蛋白质是细胞功能的执行者,各种疾病的发生和蛋白质功能的异常是分不开的。RNAi不仅可以使细胞产生特定基因表型,而且它还具有高效和特异的特点。因此,它在新药的开发与研究上具有广阔的前景。比如RNAi可以作为寻找新的药物靶标的工具[6],可以高通量地对发现的药物靶基因做功能分析,可帮助了解药物作用的生化模式等。

3.3探索基因功能的工具

由于RNAi可以使特异基因mRNA发生降解,从而获得特定蛋白功能丧失或降低的突变株。因此,RNAi可以作为一种强有力的研究工具,用于后基因组的研究。线虫全基因组已于1998年测序完毕,RNAi的发现又为系统和高通量研究线虫全基因组功能提供了可能。目前已探索了几乎整个线虫的所有基因(约19 000个)。植物的全基因组探索也正在进行中。

展望

RNAi作为一种改变基因表达的方法已在许多生物中进行了尝试,取得了不同程度的成功。研究已发现在培养的人类细胞中确实存在RNAi现象,使人们看到了将RNAi作为遗传学工具用于哺乳类乃至人类进行研究的曙光[7]。虽然RNAi研究的历史很短,许多问题仍有待认识、解决,但随着对RNAi机制的深入理解,RNAi将在功能基因组学、发育生物学研究,以及疾病的基因治疗等方面发挥巨大的作用。

参 考 文 献

[1] Koch A, Kogel K H. New wind in the sails: improving the agronomic value of crop plants through RNAi-mediated gene silencing.[J]. Plant Biotechnology Journal, 2014, 12(7):821-831

[2] 付文金, 巢时斌, 彭剑雄. RNA干扰[J]. 中国细胞生物学学报, 2002, 24(5):279-282.

[3] Zamore P D, Tuschl T, Sharp P A, et al. RNAi: double-stranded RNA directs the ATP-dependent cleavage of mRNA at 21 to 23 nucleotide intervals.[J]. Cell, 2000, 101(1):25-33.

[4] 万志红, 王宇明. 基因功能研究新途径-RNA干扰[J]. 世界华人消化杂志, 2004, 12(4):962-964.

[5] 万志红, 王宇明. 基因功能研究新途径-RNA干扰[J]. 世界华人消化杂志, 2004, 12(4):962-964.

[6] 吴涛, 石宝晨, 陈润生. RNA干涉现象的发现与研究进展——2006年诺贝尔生理学或医学奖简介[J]. 生物化学与生物物理进展, 2006, 33(10):915-917.

[7] 孙秀菊. RNA干涉:沉默基因的机制及应用研究新进展[J]. 国际遗传学杂志, 2002, 25(6):313-316.