我院107例血小板假性减少的原因分析及解决方案

葛 颂

（南京鼓楼医院集团宿迁市人民医院，江苏 宿迁 223800）

1 资料与方法

1.1 一般资料

回顾性分析我院2019年3月至8月门诊及住院病人血常规检测中107例血小板假性减少的样本，分析减少的原因并针对性解决，纠正血小板计数。

1.2 仪器与试剂

Sysmex XN-2000全自动血球分析仪，Sysmex XN-550全自动血球分析仪，相应的进口配套试剂，奥林巴斯双目显微镜（CX41RF），瑞氏-吉姆萨染色液（珠海贝索生物技术有限公司），37℃恒温箱，真空EDTA-K2抗凝管（贝克曼）及枸橼酸钠抗凝管（贝克曼）。

1.3 方法

对2019年3月至8月107份假性血小板减少的标本进行涂片、瑞氏染色及镜检，观察镜下血小板分布及形态，必要时估算其血小板数量。镜下估算血小板值的前提是涂片中无血小板聚集，选取体尾交界处，红细胞无明显重叠，正常为平均每个油镜视野8～15个，小于8个每油镜为减少[1]。与镜检结果一致，且与临床相符的为真性血小板减少。与镜检结果一致，但与临床资料不符，怀疑抽血不规范导致血小板消耗的或者原因不明的，需重新采血复查。镜检结果与血球仪所得结果不一致的，查找原因并纠正。镜检见簇状或片状聚集的，采EDTA抗凝血和枸橼酸钠抗凝血两管复查；镜检见较多大血小板的，用Sysmex XN-550全自动血球分析仪复测；镜检涂片估计值比血球仪所得结果高的，将标本重新混匀数次再复测；血量少，镜下有聚集，重抽复测；涂片见红细胞簇状聚集的，将血标本放37℃水浴箱孵育半小时复测；未见聚集且与临床不符的重新抽血复测或机旁即刻抽血即刻检测。

2 结 果

107份假性血小板减少的标本中，其中镜下血小板成簇或呈片状聚集的19例，镜下有较多的大及巨大血小板的28例，血小板数量比测得值高的 5 例，镜下有聚集的42例，红细胞簇状聚集1例，血量少，未见聚集且与临床不符的12例，找出引起其假性减少的原因并予相应方法纠正，纠正后结果得到改善。见表1。

表1 假性血小板标本镜检情况纠正方法比较（n，%）

3 讨 论

仪器法检测红细胞和白细胞结果比较稳定，而血小板由于其体积小，自身抗体，易聚集等原因，易导致结果不准，其中以血小板假性减少最多见[2]。而造成血小板假性减少的主要因素及解决方案分析如下。

检测血常规的抗凝剂为EDTA-K2抗凝剂，一般情况下， EDTA-K2抗凝血对细胞形态及血小板聚集性几乎没影响[3][4]。但也是最容易导致假性血小板减少的抗凝剂[5]，改用枸橼酸管抗凝血可获得较为准确的血小板计数[6]。

仪器法测血小板，当血小板MPV超过30fl时，血球仪无法将其计数到血小板里，而导致血小板假性减少[7]。血球仪计数血小板的原理一般是阻抗法，即依据测定血小板体积计数的，而Sysmex XN-550全自动血球分析仪网织红细胞检测通道可以利用荧光染色法计数血小板，荧光染色法克服了阻抗法计数的局限性。所以当有大及巨大血小板比例升高时，采用荧光染色法复检，更能确保血小板准确性和可靠性[8]。

上机前未充分混匀标本，颠倒混匀不充分，会影响抗凝效果，也是导致血小板假性减少的因素之一。由于每日标本量较大，在批量上机前如果不能及时手动混匀，全自动血球分析仪也未能充分混匀标本，就会影响抗凝效果，使血小板在标本中分布不均，从而导致血小板假性减少。因此，用血球分析仪检测血标本要注意检测前将标本充分混匀。

静脉多次穿刺，采血手法不顺畅，引起组织因子混入，产生肉眼看不见的凝块，是引起假性血小板减少的原因之一[9]。本文中血样采集不当50.5%,是造成假性减少的主要原因，分析上表，包括血涂片镜下有聚集现象及未见聚集但与临床不符。其中未见聚集但与临床不符的占11.2%，分析是血小板的生理活性，容易破碎及聚集，而使血小板消耗的。而造成血小板消耗的原因，主要是临床采血不规范，采血不畅，采血时间长，采血后未及时混匀。这就要求加强护理，检验采血人员的规范化操作，减少血小板假性减少的比率。另外，当镜检未见血小板聚集时，需要获取病人临床信息以了解病人的情况，当病人没有血小板减少的相关体征或临床表现时，就需要排除血小板假性减少的可能。本次研究抽血不顺是导致血小板假性减少的主要因素，这与文献所说的EDTA-K2抗凝血是导致血小板假性减少最常见原因不相符。

分析上表，11.2%为涂片未见聚集但与临床不符的血小板假性减少的情况，其余88.8%的标本均在涂片镜检时发现。因此，出现血小板减少情况时，在排除仪器，试剂，质控等因素外，应该结合病人临床表现，标本情况，镜检情况等综合分析，排除血小板假性减少的因素，注重血涂片在鉴别诊断假性血小板减少中的极其重要作用，确保检验结果准确性与可靠性，以更好的协助临床诊疗。