COLIA1调控小鼠神经细胞迁移在神经管畸形中的作用

2021-11-27 12:31黄天楚黄琬淇顾卉袁正伟
中国医科大学学报 2021年11期
关键词:神经管神经细胞胚胎

黄天楚,黄琬淇,顾卉,袁正伟

(中国医科大学附属盛京医院卫生部小儿先天畸形重点实验室,沈阳 110004)

神经管畸形(neural tube defects,NTDs)是胚胎发育过程中神经板无法闭合形成神经管而造成的,全世界约有3%新生儿患有这种缺陷,是导致围产期婴儿死亡的原因之一[1]。NTDs通常分为开放性缺损(颅脊柱裂、无脑畸形和脊髓脊膜膨出)和闭合性缺损(脑膨出、脑膜膨出和隐性脊柱裂)[2]。

细胞迁移是神经管闭合过程中重要的生物学功能之一。随着细胞的迁移会失去其极性和细胞间黏附性,细胞间黏附分子发生改变,使上皮细胞转变成具有侵袭性的间充质细胞,这一过程被称为上皮细胞间质转化(epithelial mesenchymal transition,EMT)[3]。Ⅰ型胶原蛋白α1(collagen type Ⅰα 1,COLIA1)是胶原蛋白家族的成员,广泛分布于骨骼、软骨、皮肤、心脏瓣膜、肺以及结缔组织中[4]。研究[5]显示,COLIA1突变可能会导致胚胎发育过程中的成骨不全。此外,SUN等[6]研究表明,COLIA1可能通过NF-κB信号通路调节恶性星形细胞瘤细胞的侵袭能力,促进肿瘤细胞的迁移。目前,COLIA1与NTDs的关系研究尚未见报道。本研究探讨全反式维甲酸(all-transretinoic acid,ATRA)诱导的小鼠NTDs模型中COLIA1表达对神经细胞迁移活动的影响,旨在为阐明NTDs的发生机制提供新的理论依据。

1 材料与方法

1.1 NTDs模型制备及组织样本收集

8~10周龄C57B1/6J雌性小鼠(北京华阜康生物技术有限公司)30只,饲养于中国医科大学附属盛京医院SPF级实验动物房。于前1 d晚合笼,第2天观察雌性小鼠有无阴道栓存在,有阴道栓雌性小鼠单独放一笼,标记为孕0 d(E0)。在E8.5将已孕小鼠随机分为NTDs组[将ATRA(70 mg/kg)溶于橄榄油后,给予一次灌胃处理,n=15)、对照组(给予同体积的橄榄油灌胃,n=15)。于E9.5处死,剖宫取出胎鼠。

1.2 细胞培养和转染

小鼠神经干细胞C17.2培养于含10%胎牛血清(美国Gibco公司)、1%MEM NEAA(美国Gibco公司)、1%双 抗(100 U/mL青霉素、100 μg/mL链霉素)的EMEM(美国Gibco公司)中,于37 ℃,5%CO2的细胞培养箱中培养。培养24 h后转染sh-negative control(sh-NC)、sh-COLIA1 1#、sh-COLIA1 2#、sh-COLIA1 3#(中国吉玛公司)至C17.2细胞。

1.3 Western blotting检测

从胚胎和转染后48 h的C17.2细胞中用RIPA提取蛋白质。通过8%的SDS-PAGE电泳分离样品蛋白,然后电转印至PVDF膜上,用5%脱脂牛奶封闭2 h。一抗 COLIA1(1 ∶1 000,美国Cell Signal Technology公司)、E-cadherin(1 ∶1 000,美国BD公司),Snail(1 ∶1 000,中国万类公司)、Vimentin(1 ∶1 000,中国 Proteintech公司)、β-actin(1 ∶1 000,中国 Proteintech公司)4 ℃下过夜。第2天用TBST室温洗膜3次,每次10 min,然后在室温下与HRP兔和鼠二抗(1 ∶5 000,中国 Proteintech公司)孵育2 h,ECL试剂发光。

1.4 细胞划痕实验

在6孔板中加入约 5×105细胞,第2天用枪头进行划痕,PBS 洗涤细胞 3 次去除划下的细胞,加入无血清培养基,在5% CO2的细胞培养箱中培养48 h后拍照。

1.5 细胞Transwell迁移实验

转染细胞撤血清饥饿12~24 h后消化细胞,终止消化后离心弃去培养液,PBS洗1~2次后无血清培养基重悬,调整细胞密度为5×105/mL。取细胞悬液100 μL加入8孔Transwell小室的上室,下室加入600 μL含血清的培养基,培养细胞12~48 h。取出Transwell小室,弃去孔中培养液,甲醇固定30 min,将小室适当风干。0.1%结晶紫染色20 min,用棉签轻轻擦掉上层未迁移细胞,PBS洗3次。显微镜(×200)下随机5个视野计数细胞。

1.6 统计学分析

利用SPSS 26.0软件进行统计分析,GraphPad8.0统计软件作图,计量资料以表示;组间比较采用独立样本t检验,P< 0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 COLIA1在ATRA致畸小鼠模型中的表达

Western blotting检测E9.5小鼠胚胎组织COLIA1的表达结果显示,对照组、NTDs组COLIA1表达分别为1.132±0.118,0.875±0.106。与对照组比较,NTDs组COLIA1表达显著降低(P< 0.05),COLIA1的表达对NTDs的形成可能起到抑制作用。见图1。

图1 E9.5天小鼠胚胎正常组和NTDs组COLIA1的表达Fig.1 Expression of COLIA1 in E9.5 mice embryos between control and NTDs groups

2.2 对照组和NTDs组E-cadherin、Vimentin 和 Snail表达比较

结果显示,与对照组比较,NTDs组Vimentin和Snail表达降低,而E-cadherin表达上升(均P< 0.05)。说明在NTDs胚胎中细胞迁移能力降低,EMT进程减慢,推测COLIA1可能抑制神经管闭合中迁移活动以及EMT的发生。见图2、表1。

表1 对照组和NTDs组E-cadherin、Vimentin 和 Snail 表达比较Tab.1 Comparison of E-cadherin,Vimentin,and Snail protein expression between control and NTDs groups

图2 对照组和NTDs组E-cadherin、Vimentin 和 Snail 的表达Fig.2 Expression of E-cadherin,Vimentin,and Snail between control and NTDs groups

2.3 COLIA1对神经细胞迁移活动的影响

为了探究COL1A对神经细胞迁活动的影响,分别在C17.2细胞中转染sh-NC、sh-COLIA1 1#、sh-COLIA1 2#、sh-COLIA1 3#载体48 h后进行Western blotting检测,结果显示沉默COLIA1时,沉默2链效果更明显,因此后续实验应用sh-COLIA1 2#载体 。结果显示,与对照组比较,sh-COLIA1 2#组E-cadherin表达明显上升(P< 0.05),而Snail、Vimentin表达明显下降(P<0.05),提示COLIA1能够促进EMT的发生,见表2、图3。此外,细胞划痕以及Transwell迁移实验结果显示沉默COLIA1可明显抑制神经细胞的迁移(图4)。

表2 sh-NC组、sh-COLIA1 2#组E-cadherin、Vimentin 和 Snail表达比较Tab.2 Comparison of E-cadherin,Vimentin,and Snail expression between sh-NC and sh-COLIA1

图3 转染COLIA1后各组E-cadherin、Vimentin 和 Snail 表达比较Fig.3 Comparison of E-cadherin,Vimentin,and Snail expression after transfecting sh-NC and sh-COLIA1

图4 迁移和划痕试验检测转染后C17.2细胞迁移功能的改变Fig.4 Effect of migration and scratch test of C17.2 cells after transfection

3 讨论

神经嵴干细胞具有强大迁移能力和多项分化潜能,是具有迁徙功能的过渡性多能细胞群体[7]。随着神经褶皱开始闭合形成神经管,于神经外胚层和非神经外胚层边界的神经嵴脱层,沿着整个前后体轴广泛迁移,分化形成其他不同结构[7]。在神经板闭合为神经管的过程中,EMT进程参与神经细胞的迁移、游走和定植的调控。在EMT进程中,具有上皮特性E-cadherin随着EMT的发生表达逐渐降低[8]。E-cadherin主要定位于胚胎表皮外胚层细胞和神经板边界,随着细胞的迁移,神经板内陷,中央神经板逐渐与外胚层分离,E-cadherin逐渐失去。因此,E-cadherin表达增高,细胞迁移失败,导致神经管闭合失败[9]。Snail作为EMT转录抑制因子可与编码E-cadherin基因的启动子中保守的E-box序列相结合,使E-cadherin的表达下调,并且研究[10]证实,Snail高表达可促进了神经嵴细胞的迁移,并参与神经管的分层。此外,研究显示在NTDs胎儿中Vimentin表达下调[11]。由此可见,神经细胞的迁移活动对神经管的闭合有重要作用,并且EMT标志物会伴随神经管闭合过程变化,与本研究结果一致。已有研究[12-13]报道转录因子Pax3对于明确神经板边界和促进神经嵴细胞的形成至关重要,并且调控EMT的关键转录因子Snail可作为Pax3的直接靶点。本研究发现,在神经管闭合过程中COLIA1能够引起EMT标志物E-cadherin、Snail和Vimentin表达的变化,进而调控细胞迁移,但这些EMT标志物是否为COLIA1的直接靶点以及具体的调控机制还有待进一步研究论证。

COLIA1可作为成骨标志物参与成骨的形成,还可作为哺乳动物最丰富的细胞外间质(extracellular matrix,ECM)之一[14]。而ECM周期性重塑对细胞的迁移活动同样至关重要。已有大量研究证实COLIA1调控细胞迁移活动。COLIA1可促进胃癌细胞的迁移和侵袭,COLIA1过表达诱导TGF-β信号通路激活,进而促进EMT进程[15]。本研究在NTDs模型中发现COLIA1表达降低且伴随EMT相关指标异常。另外,当沉默C17.2细胞的COLIA1表达后,细胞的迁移活动降低,促进EMT进程标志物表达下降。由此表明,COLIA1表达降低可能抑制了神经管发育过程中神经细胞的迁移活动。

综上所述,COLIA1能够促进细胞的迁移活动以及EMT进程,进而减少NTDs的发生。COLIA1有望成为治疗NTDs的新靶点,然而关于COLIA1如何具体调控EMT进程中的关键分子以及EMT上游分子(PAX3等)与COLIA1之间的关系尚不明确,有待于进一步研究论证。

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