苍耳亭通过ERK/JNK信号通路对溃疡性结肠炎大鼠肠道黏膜组织损伤的影响*

2022-11-09 00:51吕小燕
中医药导报 2022年8期
关键词:苍耳批号结肠

张 瑜,吕小燕

(山西省中医院,山西 太原 030012)

溃疡性结肠炎(ulcerative colitis,UC)是一种慢性非特异性肠道炎症疾病,主要临床表现为体质量下降、呕吐腹泻、黏液便血等[1]。UC的发病机制暂不明确,大量研究认为是由感染、免疫及遗传等多种因素引起肠黏膜屏障功能受损,造成溃疡[2],且黏膜损伤不易治愈,反复发作,给人们日常生活与健康带来了严重威胁[3]。目前临床上治疗UC多使用糖皮质激素类生物制剂,虽然这类药物治疗UC效果显著,但其不良反应大且复发率较高[4]。研究表明,中医药可以修复受损肠黏膜[5-6]。苍耳亭是存在于多刺菊科苍耳属植物的一种倍半萜内酯化合物,具有抗炎、抗肿瘤、抗溃疡的作用[7]。MAPK家族成员细胞外信号调节激酶(extracellular signal-regulated protein kinase,ERK)和c-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)参与调控机体炎症反应以及免疫应激等多种病理过程,介导肿瘤细胞的增殖与分化[8]。本研究通过建立UC大鼠模型,探究苍耳亭对UC大鼠肠道黏膜的保护作用以及对ERK/JNK信号通路的调控作用。

1 材料与方法

1.1 实验动物 6周龄SPF级SD雄性大鼠90只,体质量200~220 g,由济南朋悦实验动物繁育有限公司提供,动物生产许可证号:SCXK(鲁)2019-0003。实验过程符合“3R”原则,并得到动物伦理委员会批准,动物伦理审查号:AWE-2019-004。实验前大鼠适应性饲养1周,环境条件为温度22~25 ℃,相对湿度40%~50%,昼夜时长12 h:12 h。

1.2 药物与试剂 2,4,6-三硝基甲苯磺酸(TNBS)(批号:146817)购自临沂艾科化学试剂有限公司;柳氮磺胺吡啶(批号:S0883)购自美国Sigma公司;苍耳亭(批号:C-033)购自成都瑞芬思生物科技有限公司;IL-6检测试剂盒(批号:SNDR734)、TNF-α检测试剂盒(批号:SND-R635)、IL-10检测试剂盒(批号:SND-R793)均购自滁州仕诺达生物科技有限公司;咬合蛋白(Occludin)(批号:91131S)、紧密连接蛋白1(Claudin-1)(批号:4933S)、Caspase-3(批号:9662S)、p-ERK抗体(批号:5726S)、ERK抗体(批号:4696S)、p-JNK抗体(批号:4668S)、JNK抗体(批号:9252S)、羊抗兔二抗(批号:7074S)、羊抗小鼠二抗(批号:7076S)均购自美国CST公司;HE染色试剂盒(批号:G1120)、DAB显色试剂盒(批号:DA1016)、高效RIPA裂解液(批号:R0010)、BCA蛋白检测试剂盒(批号:PC0020)、ECL发光试剂盒(批号:SW2040)均购自北京索莱宝生物技术公司。

1.3 主要仪器 Contour Elite三维光学显微镜(美国布鲁克公司);JXFSTPRP-24/32全自动样品快速研磨机(上海净信实业发展有限公司);Mini P-4小型垂直电泳系统(北京凯元信瑞仪器有限公司);SIM凝胶成像分析系统(美国Bio-Best公司)。

1.4 模型建立与分组 90只SD大鼠按照随机数字表法分为正常组、模型组、阳性药物组、苍耳亭低剂量组、苍耳亭中剂量组、苍耳亭高剂量组,每组15只。参照文献[9]建立大鼠UC模型:采用5%TNBS与50%乙醇等比例混合配制造模剂混合液。6组大鼠禁食不禁水36 h,腹腔注射水合氯醛麻醉,采用灌胃针从大鼠肛门插入约8 cm,正常组大鼠给予生理盐水1 mL,其余5组大鼠给予造模剂1 mL。造模完成后,观察大鼠状态变化,出现血便、消瘦、少食、精神沉郁、反应迟钝等表现,提示造模成功[10]。

1.5 实验给药 造模成功后24 h进行给药,阳性药物组大鼠灌胃给予柳氮磺胺吡啶溶液,300 mg/kg[11];根据《实验动物和动物实验技术》进行给药量计算,参照大鼠与人体表面积等效剂量比值折算,苍耳亭低、中、高剂量组大鼠分别灌胃给予苍耳亭溶液100、200、400 mg/kg,正常组与模型组大鼠给予等体积蒸馏水。1次/d,2 mL/次,连续给药2周。

1.6 观察指标

1.6.1 疾病活动指数(disease activity index,DAI)与结肠黏膜损伤指数(colonic mucosa damage index,CMDI)的评估 记录各组大鼠排出的粪便性状、便血情况和体质量变化,取3项得分的平均数作为DAI评分。治疗结束后处死大鼠,取出完整结肠,进行CMDI评分。DAI与CMDI评分标准见表1。

表1 DAI 与CMDI 评分标准[12-13]

1.6.2 HE染色观察大鼠结肠黏膜病理变化 评分结束后清洗结肠黏膜组织,每组随机取5只大鼠结肠黏膜组织置于多聚甲醛中固定,制备常规石蜡切片,进行HE染色,置于光学显微镜下观察结肠黏膜病理变化。

1.6.3 ELISA法检测结肠黏膜组织中IL-6、TNF-α、IL-10含量 评分结束后,每组随机取5只大鼠结肠黏膜组织,按照与PBS溶液1∶9的比例,进行匀浆,取上清液,按照ELISA试剂盒说明书进行操作,检测结肠黏膜组织中IL-6、TNF-α、IL-10含量。

1.6.4 免疫组化检测结肠黏膜组织中Occludin、Claudin-1、Caspase-3蛋白表达 取制备好的大鼠结肠黏膜组织切片,进行脱蜡水合,采用枸橼酸溶液进行抗原修复,H2O2孵育后,加入山羊血清封闭,清洗后加入Occludin、Claudin-1、Caspase-3一抗,4 ℃孵育,次日加入二抗,室温孵育,采用DAB法显色,再进行冲洗,苏木精复染,封片,显微镜下拍照,采用Image 7.0图像分析软件测定Occludin、Claudin-1、Caspase-3积分光密度值。

1.6.5 Western blotting法检测ERK/JNK信号通路相关蛋白的表达 取剩余大鼠结肠黏膜组织,加入蛋白裂解液,匀浆后提取总蛋白并采用BCA法测定蛋白浓度,取50 μg蛋白上样,电泳、转膜,5%脱脂奶粉封闭,加入稀释好的p-ERK、ERK、p-JNK、JNK一抗,4 ℃孵育过夜,加入稀释好的二抗,室温孵育1.5 h,采用ECL发光试剂盒显色,凝胶成像分析系统采集图像并分析灰度值,以GAPDH为内参,计算p-ERK/ERK、p-JNK/JNK。

1.7 统计学方法 采用Graphpad Prism 8.0统计学软件进行数据分析,计量资料以“均数±标准差”()表示。多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用SNK-q检验。以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 各组大鼠DAI与CMDI评分比较 与正常组比较,模型组大鼠DAI与CMDI评分均明显升高(P<0.05);与模型组比较,阳性药物组与苍耳亭低、中、高剂量组大鼠DAI与CMDI评分均明显降低(P<0.05);与阳性药物组比较,苍耳亭低、中剂量组大鼠DAI与CMDI评分均明显升高(P<0.05);苍耳亭高剂量组大鼠DAI与CMDI评分与阳性药物组比较,差异均无统计学意义(P>0.05)。苍耳亭各剂量组间存在剂量依赖性,差异有统计学意义(P<0.05)。(见表2)

表2 各组大鼠DAI 与CMDI 评分比较()

表2 各组大鼠DAI 与CMDI 评分比较()

注:与正常组比较,aP<0.05;与模型组比较,bP<0.05;与阳性药物组比较,cP<0.05;与苍耳亭低剂量组比较,dP<0.05;与苍耳亭中剂量组比较,eP<0.05

2.2 各组大鼠结肠黏膜组织病理变化 正常组大鼠结肠黏膜上皮组织整齐,细胞排列密集,可见杯状隐窝,无病变;模型组大鼠结肠黏膜可见隐窝消失,大量炎症细胞浸润,黏膜下层也出现炎症现象;苍耳亭低剂量组大鼠结肠黏膜上皮组织仍可见一些炎症细胞浸润,未见隐窝;苍耳亭中剂量组大鼠结肠黏膜病变情况减轻,可见隐窝结构,少量炎症细胞浸润;苍耳亭高剂量组与阳性药物组大鼠结肠黏膜组织逐渐趋于正常,可见明显隐窝,未见炎症细胞浸润。(见图1)

图1 各组大鼠结肠黏膜病理切片图(HE,×200)

2.3 各组大鼠结肠黏膜组织中IL-6、TNF-α、IL-10含量比较 与正常组比较,模型组大鼠结肠黏膜组织中IL-6、TNF-α含量均明显升高(P<0.05),IL-10含量明显降低(P<0.05);与模型组比较,阳性药物组和苍耳亭低、中、高剂量组大鼠结肠黏膜组织中IL-6、TNF-α含量均明显降低(P<0.05),IL-10含量明显升高(P<0.05),且苍耳亭各剂量组间比较,差异均有统计学意义(P<0.05);与阳性药物组比较,苍耳亭低、中剂量组大鼠结肠黏膜组织中IL-6、TNF-α含量均明显升高(P<0.05),IL-10含量明显降低(P<0.05);苍耳亭高剂量组大鼠结肠黏膜组织中IL-6、TNF-α、IL-10含量与阳性药物组比较,差异均无统计学意义(P>0.05)。(见表3)

表3 各组大鼠结肠黏膜组织中IL-6、TNF-α、IL-10含量比较()

表3 各组大鼠结肠黏膜组织中IL-6、TNF-α、IL-10含量比较()

注:与正常组比较,aP<0.05;与模型组比较,bP<0.05;与阳性药物组比较,cP<0.05;与苍耳亭低剂量组比较,dP<0.05;与苍耳亭中剂量组比较,eP<0.05

2.4 各组大鼠结肠黏膜组织中Occludin、Claudin-1、Caspase-3表达比较 与正常组比较,模型组大鼠结肠黏膜组织中Occludin、Claudin-1表达明显降低(P<0.05),Caspase-3表达明显升高(P<0.05);与模型组比较,阳性药物组和苍耳亭低、中高剂量组大鼠结肠黏膜组织中Occludin、Claudin-1表达明显升高(P<0.05),Caspase-3表达明显降低(P<0.05);与阳性药物组比较,苍耳亭低、中剂量组大鼠结肠黏膜组织中Occludin、Claudin-1表达明显降低(P<0.05),Caspase-3表达明显升高(P<0.05);苍耳亭高剂量组大鼠结肠黏膜组织中Occludin、Claudin-1、Caspase-3表达与阳性药物组比较,差异均无统计学意义(P>0.05)。苍耳亭各剂量组间大鼠结肠黏膜组织中Occludin、Claudin-1、Caspase-3表达比较,差异有统计学意义(P<0.05)。(见图2、表4)

图2 各组大鼠结肠黏膜组织中Occludin、Claudin-1、Caspase-3 的表达情况(免疫组化,×400)

表4 各组大鼠结肠黏膜组织中Occludin、Claudin-1、Caspase-3 表达水平比较()

表4 各组大鼠结肠黏膜组织中Occludin、Claudin-1、Caspase-3 表达水平比较()

注:与正常组比较,aP<0.05;与模型组比较,bP<0.05;与阳性药物组比较,cP<0.05;与苍耳亭低剂量组比较,dP<0.05;与苍耳亭中剂量组比较,eP<0.05

2.5 各组大鼠结肠黏膜组织中ERK/JNK信号通路相关蛋白表达比较 与正常组比较,模型组大鼠结肠黏膜组织中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK明显升高(P<0.05);与模型组比较,阳性药物组和苍耳亭低、中、高剂量组大鼠结肠黏膜组织中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK均明显降低(P<0.05);与阳性药物组比较,苍耳亭低、中剂量组大鼠结肠黏膜组织中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK均明显升高(P<0.05);苍耳亭高剂量组大鼠结肠黏膜组织中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK与阳性药物组比较,差异均无统计学意义(P>0.05);苍耳亭各剂量组间结肠黏膜组织p-ERK/ERK、p-JNK/JNK比较,差异有统计学意义(P<0.05)。(见图3、表5)

图3 各组大鼠结肠黏膜组织中p-ERK、ERK、p-JNK、JNK蛋白表达Western blotting 图

表5 各组大鼠结肠黏膜组织中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK 的比较()

表5 各组大鼠结肠黏膜组织中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK 的比较()

注:与正常组比较,aP<0.05;与模型组比较,bP<0.05;与阳性药物组比较,cP<0.05;与苍耳亭低剂量组比较,dP<0.05;与苍耳亭中剂量组比较,eP<0.05

3 讨论

UC是一种严重的肠道炎症性疾病,其发病机制复杂,以结肠黏膜充血、糜烂为主要病理特征[14]。研究[15-16]证实UC的发生与免疫应答紊乱、炎症反应以及肠道黏膜屏障受损有关。研究[17]表明,UC发生时,结肠黏膜组织中炎症反应被持续激活,大量炎症因子如TNF-α、IL-18等分泌,引起肠道黏膜屏障功能被破坏,肠黏膜组织受损。Claudin-1蛋白是一种紧密连接蛋白,能够维护结肠黏膜屏障的完整性和通透性[18]。Occludin蛋白是紧密连接中最重要的结构蛋白,参与紧密连接信号调节[19]。研究[20]表明,Occludin、Claudin-1表达下调,导致结肠黏膜组织通透性增加,结肠黏膜屏障功能受阻,导致UC发生。本研究结果显示,UC模型大鼠DAI与CMDI评分均明显升高,结肠黏膜组织病变严重,结肠黏膜组织中炎症因子IL-6、TNF-α含量明显升高,IL-10含量明显降低,且Occludin、Claudin-1表达明显下调,提示结肠黏膜组织中炎症反应被激活,结肠黏膜屏障功能被破坏,结肠黏膜组织受损,提示UC模型建立成功。

苍耳亭作为一种倍半萜内酯类化合物,具有抗炎、抗氧化、抗肿瘤等多种药理作用[21]。有研究[22]表明,苍耳亭能够通过介导细胞凋亡起到抗肿瘤的作用。本研究结果表明,低、中、高剂量苍耳亭干预后的UC大鼠结肠黏膜组织中炎症因子IL-6、TNF-α含量均明显降低,IL-10含量明显升高,Occludin、Claudin-1表达明显上调,结肠黏膜组织损伤减轻,提示苍耳亭能够减轻炎症反应,对UC大鼠结肠黏膜屏障功能和组织损伤具有保护作用。

ERK、JNK是丝氨酸蛋白酶家族的两种代表性蛋白酶,可参与肠道损伤,介导细胞分化,诱导多种细胞因子、蛋白的表达[23-24]。ERK、JNK在UC的发生中参与炎症反应与氧化应激反应,细胞中分泌的促炎因子能够激活JNK参与炎症反应[25]。ERK受到炎症因子刺激被激活,磷酸化的ERK参与调节细胞纤维化,诱导细胞凋亡[26]。使用药物干预后,ERK/JNK信号通路被抑制,能够有效缓解DSS诱导的UC小鼠炎症反应与细胞凋亡[27]。本研究结果显示,UC大鼠结肠黏膜组织中Caspase-3表达与p-ERK/ERK、p-JNK/JNK上调,提示结肠黏膜组织中细胞凋亡增加,ERK/JNK信号通路被激活。而苍耳亭干预后的UC大鼠结肠黏膜组织中Caspase-3表达与p-ERK/ERK、p-JNK/JNK下调,提示苍耳亭可能通过下调ERK、JNK磷酸化表达,抑制UC大鼠炎症反应与细胞凋亡,并上调Occludin、Claudin-1表达,改善结肠黏膜屏障功能,减轻UC大鼠结肠黏膜组织损伤。

综上所述,苍耳亭能够下调UC大鼠促炎因子IL-6、TNF-α和Caspase-3的表达,减轻炎症反应,抑制细胞凋亡,上调抑炎因子IL-10和Occludin、Claudin-1表达,改善结肠黏膜屏障功能,减轻结肠黏膜组织损伤,其机制可能与抑制ERK/JNK信号通路表达有关,这为中医药治疗UC提供了新的理论依据。

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