一测多评法同时测定蟾皮中7种蟾毒内酯

2022-12-02 13:12祝坤赟周成美李芳洁胡晶红张永清
中成药 2022年7期
关键词:蟾蜍内酯色谱

祝坤赟, 周成美, 任 鑫, 李芳洁, 胡晶红,2*, 张永清,2*, 刘 谦,2

(1.山东中医药大学,山东 济南 250355;2.山东省质量控制与中药全产业链建设协同创新中心,山东 济南 250355)

蟾皮别名蟾皮、蛤蟆皮,为蟾蜍科动物中华大蟾蜍BufobufogargarizansCantor或黑眶蟾蜍BufomelanosticusSchneider的干燥全皮[1],最早记载于《本经逢原》,临床上被广泛用于治疗恶性肿瘤、毒疮、肠头挺出等疾病,具有抗肿瘤[2]、抗炎[3]、免疫调节、抗菌与抗病毒、强心等药理作用[4-5],以华蟾素为代表的相关中药制剂在临床抗肿瘤治疗中有着突出疗效,正引起国内外学者广泛关注。但2020年版《中国药典》未收录蟾皮,地方中药材质量标准也只有广西壮族自治区、江苏省、辽宁省、河南省、陕西省收录,而且定性部分较多,定量部分缺少或模糊,整体质量控制水平不高。目前,学者普遍认为华蟾素制剂主要抗肿瘤成分为蟾皮中的蟾毒内酯[6-7],故该类成分含量测定对评价蟾皮及其提取物中药制剂质量至关重要。

一测多评法利用中药材有效成分的比例和函数关系,通过单一内标来建立对多组分的同步定量的品质评价模型,近年来在中药材多指标成分含量测定中广泛应用[8-9],但目前蟾皮中蟾毒内酯的的相关研究鲜有报道。因此,本实验通过一测多评法同时测定蟾皮中华蟾酥毒基、日蟾毒它灵、蟾毒它灵、蟾毒灵、酯蟾毒配基、远华蟾蜍精、伪异沙蟾毒精的含量,以期为控制该药材质量及相关资源开发提供参考。

1 材料

1.1 仪器 Agilent ZORBAX SB-C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);Waters Xbridge C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);Diamonsil C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);Agilent 1260 Infinity Ⅱ高效液相色谱仪(美国Agilent公司);Waters e2695高效液相色谱仪(美国Waters公司);KQ-500DE数控超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司);ME-204电子天平[万分之一,梅特勒-托利多仪器(上海)有限公司];Sorvall ST 8R离心机(热电实验设备有限公司 奥斯特罗德分公司)。

1.2 试剂与药物 华蟾酥毒基(批号W27M10Z84297,纯度≥98%)、酯蟾毒配基(批号C30S8G45143,纯度≥98%)、日蟾毒它灵(批号P17O9F72594,纯度≥98%)、远华蟾蜍精(批号Y13A9Y67875,纯度≥98%)、蟾毒灵(批号P27F10F81703,纯度≥98%)、蟾毒它灵(批号P28M10F84299,纯度≥98%)、伪异沙蟾毒精(批号Y18O9Y72597,纯度≥98%)对照品均购自上海源叶生物科技有限公司。乙腈、甲醇为色谱纯[赛默飞世尔科技(中国)有限公司]。

1.3 药材 蟾皮购自山东日照,经山东中医药大学张永清教授鉴定为蟾蜍科动物中华大蟾蜍BufobufogargarizansCantor的干燥全皮,置于65 ℃烘箱中烘干至恒重,剪成约4 mm的方形小块,放入贴好标签的离心管中备用。

2 方法和结果

2.1 色谱条件 Agilent ZORBAX SB-C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相乙腈(A)-0.1%甲酸(B);梯度洗脱(0~5 min,20%~28%A;15~30 min,28%~29%A;30~35 min,29%~36.5%A;35~45 min,36.5%~38%A;45~46 min,38%~100%A);体积流量1 mL/min;柱温30 ℃;检测波长296 nm;进样量20 μL。HPLC色谱图见图1。

2.2 对照品溶液制备 精密称取伪异沙蟾毒精、日蟾毒它灵、远华蟾蜍精、蟾毒它灵、蟾毒灵、酯蟾毒配基、华蟾酥毒基对照品适量,甲醇制成质量浓度均为0.05 mg/mL的溶液,即得。

2.3 供试品溶液制备 精密称取置于离心管中的烘干蟾皮1.0 g,放到烧瓶中,加入甲醇50 mL,加热回流提取60 min,水浴加热浓缩,甲醇定容至5 mL量瓶中,即得。

2.4 线性关系考察 精密移取对照品溶液,稀释后在“2.1”项色谱条件下进样测定,以进样量为横坐标(X),峰面积为纵坐标(Y)进行回归,结果见表1,可知各成分在各自范围内线性关系良好。

表1 各蟾毒内酯线性关系

2.5 精密度试验 精密吸取对照品溶液,在“2.1”项色谱条件下进样测定6次,测得伪异沙蟾毒精、日蟾毒它灵、远华蟾蜍精、蟾毒它灵、蟾毒灵、酯蟾毒配基、华蟾酥毒基峰面积RSD分别为0.99%、1.97%、2.41%、1.33%、1.00%、0.88%、1.31%,表明仪器精密度良好。

2.6 稳定性试验 取同一批供试品溶液,室温下于0、2、4、6、8、10、12、24 h在“2.1”项色谱条件下进样测定,测得伪异沙蟾毒精、日蟾毒它灵、远华蟾蜍精、蟾毒它灵、蟾毒灵、酯蟾毒配基、华蟾酥毒基峰面积RSD为1.96%、1.00%、0.64%、1.00%、1.17%、2.29%、1.16%,表明溶液在24 h内稳定性良好。

2.7 重复性试验 取同一批次蟾皮,平行制备6份供试品溶液,在“2.1”项色谱条件下进样测定。测得伪异沙蟾毒精、日蟾毒它灵、远华蟾蜍精、蟾毒它灵、蟾毒灵、酯蟾毒配基、华蟾酥毒基含量RSD分别为1.83%、1.73%、2.05%、1.00%、1.52%、2.40%、1.45%,表明该方法重复性良好。

2.8 加样回收率试验 取同一批次蟾皮6份,每份约0.5 g,加入100%水平对照品溶液,在“2.1”项色谱条件下进样测定,测得伪异沙蟾毒精、日蟾毒它灵、远华蟾毒精、蟾毒它灵、蟾毒灵、酯蟾毒配基、华蟾酥毒基平均加样回收率分别为99.63%、97.76%、99.12%、100.83%、98.67%、99.39%、97.61%,RSD分别为1.95%、1.58%、1.15%、1.78%、1.92%、2.14%、2.69%。

2.9 相对校正因子计算 精密吸取“2.2”项下对照品溶液适量,在“2.1”项色谱条件下进样1、2 、5、8 、10、20 μL测定,平行2次,以华蟾酥毒基为内标,计算其他6种蟾毒内酯的相对校正因子fk/s,公式为fk/s=fk/fs=(WkAs)/(WsAk)(Wk为其他成分质量浓度,Ak为其他成分峰面积,Ws为内标质量浓度,As为内标峰面积)[7],结果见表2。

2.10 各因素对相对校正因子的影响 测定不同体积流量(0.8、0.9、1.0 mL/min)、柱温(30、35、40 ℃)、仪器(Agilent 1260、Waters e2695)、色谱柱(Agilent 1260、Waters e2695、Agilent ZORBAXSB-C18、Waters Xbridge C18、Diamonsil C18)对各蟾毒内酯相对校正因子的影响,结果见表3~5,可知均无明显影响(RSD<3%)。

2.11 色谱峰定位 各蟾毒内酯在不同色谱仪、色谱柱上相对保留时间的差异较小,RSD均小于2.28%,见表6。

表3 不同体积流量对相对校正因子的影响

表4 不同柱温对相对校正因子的影响

表5 不同仪器与色谱柱对相对校正因子的影响

表6 相对校正因子保留时间

2.12 样品含量测定 取6批样品,按“2.3”项下方法制备供试品溶液,在“2.1”项色谱条件下进样测定,分别采用外标法和一测多评法计算含量,再采用t检验进行统计学分析,结果见表7,可知2种方法所得结果接近。

3 讨论

3.1 色谱柱选择 蟾皮中蟾毒内酯含量较低,为了提高检测准确度,需要较大的进样体积。本实验发现,在Agilent InfinityLab Poroshell 120 EC-C18色谱柱(3.0 mm×150 mm, 2.7 μm)(短柱)下各蟾毒内酯色谱峰出现前延,可能是其载样量较小所致,而在Agilent ZORBAX SB-C18色谱柱(4.6 mm×250 mm, 5 μm)(长柱)下未出现上述现象,峰形良好,故选择其开展后续研究。

3.2 流动相选择 本实验以乙腈[10]为有机相,对甲酸[11]、乙酸[12]、磷酸二氢钾[13-14]、磷酸[15]、纯水[16]等无机相进行了考察。结果,以乙腈-0.1%甲酸洗脱时各蟾毒内酯色谱峰峰形良好,均在40 min前即出峰,效率高,分离度理想。

3.3 供试品溶液制备方法选择 本实验以各蟾毒内酯提取率为考察指标,固定甲醇为提取溶液,考察了不同提取方法(加热回流、超声[17-18])、料液比(1∶20、1∶50、1∶100)、提取时间(30、60、90 min[19-20])。最终,选择料液比1∶50,加热回流提取60 min后浓缩作为供试品溶液制备方法。

表7 各蟾毒内酯含量测定结果(mg/g,n=2)

4 结论

本实验首次采用一测多评法同时测定蟾皮中华蟾酥毒基、日蟾毒它灵、蟾毒它灵、蟾毒灵、酯蟾毒配基、远华蟾蜍精、伪异沙蟾毒精7种蟾毒内酯的含量,通过精密度、重复性、稳定性试验,以及相对校正因子在不同柱温、体积流量、仪器、色谱柱下的耐用性,验证了该方法的准确性和可行性,可为确保该药材质量稳定提供依据。

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