耐低温真菌对土壤中吸附态PAHs的降解特性

2023-10-16 08:50董昱杉刘凤飞
中国新技术新产品 2023年17期
关键词:孢霉半衰期丙酮

苏 丹 赵 祥 董昱杉 刘凤飞 王 鑫

(1.辽宁大学环境学院,辽宁 沈阳 110036;2.沈阳大学区域污染环境生态修复教育部重点实验室,辽宁 沈阳 110044)

多环芳烃(Polycyclic Aromatic Hydrocarbons,PAHs)化合物是一类性质稳定、在环境介质中广泛存在,且具有“三致”效应的有机污染物[1]。随着固定化微生物以及生物强化技术的发展,高效优势菌种的纯化分离及其降解特性,成为PAHs 微生物修复技术应用的关键[2]。针对北方寒冷地区多环芳烃污染的土壤修复的技术需求,该研究从鸡西某炼油厂受冻融交替作用的表层PAHs 污染土壤中,筛选分离出1 株以腐殖酸(Humic Acid,HA)吸附态PAHs 为碳源的耐低温菌株——高山被孢霉(Mortierella alpina JDR7),将其作为耐低温真菌降解PAHs,为北方寒冷地区PAHs 污染土壤修复提供了新的生物修复材料.并研究了高山被孢霉(Mortierella alpine JDR7)对冻融土壤中芘(Pyrene,Pyr)和苯并[a]芘(Benzo(a)anthracene,BaP)的降解性能,旨为在北方寒冷地区PAHs 污染土壤微生物修复提供理论和技术支持。

1 材料与方法

1.1 试剂与培养基

腐殖酸(HA)由沈阳奇特尔科技有限公司提供,其交换容量(CEC)为3.74mmol/g。芘(Pyr,纯度>98%)和苯并[a]芘(BaP,纯度>98%),丙酮(分析纯),乙腈(色谱纯),二氯甲烷(分析纯),正己烷(分析纯),水为Millipore超纯水。

营养培养基(CM 培养基):蛋白胨10.0g,葡萄糖10g,酵母粉5g,牛肉膏5g,氯化钠5g,pH 为7.0~7.2,以蒸馏水定容至1000mL,121℃灭菌25 min,固体培养基另加琼脂粉20g/L。

无机盐选择培养基:K2HPO41.0g,(NH4)2SO45g,MgSO4.7H2O 0.5g,pH 为7.0~7.2,以蒸馏水定容,121℃灭菌25min,加入10g/L 的HA 溶液,加入10mg/L~30mg/L Pyr和BaP 的丙酮溶液作为碳源和能源,置于超净工作台紫外灭菌,待丙酮挥发后用于菌种的筛选富集。

1.2 菌株对PAHs 降解试验

试验设计4 个处理组:1)对照(CK):不加HA 不接菌。2)添加HA。3)接种降解菌(JDR7)。4)添加HA并接菌(HA + JDR7)。

修复试验用土壤采自中科院沈阳生态试验站0~20cm表层清洁土,土壤为草甸棕壤,土壤过2mm 筛后,分装培养瓶中,每瓶3g,121℃高温灭菌60min,冷却后每瓶定量加入Pyr 与BaP 的丙酮溶液,使其初始浓度均为30mg/kg,放置过夜,按10%接种菌悬液,菌体初始浓度为6×106CFU/mL。按5.0%用量投加HA,随时补加无菌水,使土壤水分为30%。置冻融循环箱(ZT-CTH)中避光培养,冻融循环模式为-5℃冻结12h,15℃解冻12h,分别在0d,7d,14d,21d,28d,35d 和42d 取样测定土壤中PAHs的残留量。

用高效液相色谱HPLC(Agilent 1200 型)对PAHs 进行测定,色谱柱为C-18 柱(ZORBAX Eclipse)。提取方式如下:称取1g 土样装入50mL 玻璃瓶中,加入20mL 丙酮,15mL 二氯甲烷,10mL 15%的氯化钠溶液,超声波萃取8h。静置1h 后,吸取2mL 有机相,移至净化柱(1g中性Al2O3+1g 硅胶+1g 无水氯化钠)用25mL 正己烷,二氯甲烷(体积比为9 ∶1)淋洗,收集滤出液,浓缩至约1mL,再用柔和氮气吹干,用2mL 乙腈定容后测定,进样量10μL,流动相为乙腈/水= 85 /15( v /v),流速0.5mL/min,柱温为35℃。试验中设空白对照和平行试验进行质量控制。

2 结果和讨论

2.1 真菌对PAHs 降解能力比较

由图1 可知,2 种PAHs 在培养42 d 后均有不同程度降解,42d 后各处理土壤中PAHs 含量顺序如下:CK >HA>JDR7 >HA+JDR7。在低温条件下,Mortierella alpine JDR7 对土壤中Pyr 和BaP 显示出一定的降解能力,42d 降解率分别为68.13%和59.51%。Vacca 等[3]发现用溶液态Phe 筛选获得降解菌不具有直接矿化土壤颗粒吸附态Phe的能力。而该研究筛选的真菌Mortierella alpine JDR7 在土壤中表现出一定对Pyr 与BaP 的降解能力,这是因为JDR7是采用HA 吸附态PAHs 筛选获得的降解真菌,具有直接矿化吸附态PAHs的能力。

此外,由图1 可知,HA 的加入能够提高JDR7 对土壤中Pyr 和BaP 的降解率,42d 降解率分别为82.0%和71.8%,与JDR7 处理(未添加HA)土壤中的降解率相比分别提高13.8%和12.3%,表明HA 对PAHs的增溶作用明显。

图1 不同处理方式处理后土壤中PAHs的去除率

高分子量PAHs的低生物可利用性也是自然条件下污染土壤微生物修复的一个难点,这无疑会阻碍污染土壤修复的进程。PAHs 不易被微生物利用主要是因为其水溶性低,Mortierella alpine JDR7 可降解土壤中Pyr 和BaP,但受土壤中PAHs 生物利用率低的影响,降解率较低,而先用HA 增溶洗提土壤中的PAHs,HA 可在修复体系中形成胶束,降低油-水界面张力,PAHs 能够进入胶束内部或吸附在胶束疏水基上,减少PAHs 在土壤上的吸附,促进PAHs 从土壤有机质中解吸出来,增加其流动性,提高土壤中PAHs的生物有效性[4],从而提高PAHs的降解率。

2.2 真菌对PAHs 降解速率比较

微生物能分泌一些酶类启动其对PAHs的降解过程,底物(Pyr 或BaP)和酶属于典型的酶催化反应。反应符合Michaelis-Menton 动力学。图2(a)、图2(b)描述了经过4 种不同处理后土壤中Pyr 和BaP 随时间的降解动力学曲线。

图2 不同处理方式处理后土壤中PAHs 含量的动态变化

在试验初始阶段PAHs的降解转化速率均较快,随后则出现缓慢的反应趋势,这是因为初期PAHs 浓度较大,反应速度较快,随后PAHs 浓度降低使反应速度减慢。土壤中PAHs的扩散转运速率远远低于其降解速率,初期降解菌营养供应不足,也有降低反应速度的可能性[5]。

HA 的加入极大地提高了Mortierella alpine JDR7 对PAHs的降解速率,第一周,Pyr 和BaP 的降解速率分别为1.34-1和1.15-1,可分别降解31.36%的Pyr 和26.83%的BaP,添加HA 后,Pyr 和BaP 的降解速率分别提高至1.74-1和1.53-1,可降解40.67%的Pyr 和35.66%的BaP,较未添加HA 时降解能力分别提高29.69%和32.93%。随后5 周,Pyr 和BaP 的降解速率分别为0.32-1和0.28-1,添加HA 后,降解速率分别提高至 0.35-1和0.31-1,较未添加HA 时降解能力分别提高了12.28%和10.69%.

随着时间的推移,进入土壤的PAHs 会出现老化现象[6]。如何将土壤中吸附的PAHs 脱附出来,是提高PAHs 生物降解速率的关键步骤,HA 的加入极大地提高了JDR7 对PAHs的降解速率,原因如下:其一,Mortierella alpinaJDR7的筛选驯化是在吸附态PAHs 作为碳源的环境下进行的,使其从一开始就处于工作的环境,缩短了对吸附态PAHs降解的反应时间;其二,由于微生物细胞通常不能进入小于0.2um 的微孔隙,微生物对微孔隙中PAHs的利用受阻,使土壤中大部分PAHs 与降解菌分隔开[5],HA 是高分子聚合物,具有亲水性、吸附和络合性,能有效提高PAHs的溶解性和迁移性[7],促进PAHs 从土壤微孔隙中释放,同时,真菌JDR7 丝状菌丝生长繁密,纵横交错成网状,随着菌丝的生长而移动,使其更好的接触污染物,进而提高其对Pyr 或BaP 的降解速率。

2.3 降解动力学

建立Monod 模型,推导后得到公式(1)。

式中:c为Pyr 和BaP 浓度,mg·kg-1;t为反应时间,d;K为动力学常数。Pyr 或BaP 的降解符合一级动力学特征,结果见表1。

表1 JDR7 对土壤中多环芳烃的降解动力学和参数

经JDR7 处理的土壤中Pyr 和BaP 的半衰期分别为16.6d 和29.1d,在经BaP 处理的土壤中,该株真菌仅用20d 就可以使BaP 浓度减少50%。添加HA 后,缩短了MortierellaalpineJDR7 对PAHs的降解半衰期,Pyr 和BaP的半衰期缩短至13.9d 和17.9d。

对PAHs 有较高降解能力的微生物,不一定同时也具有较高的降解速率,所以实际应用中,要全面考虑菌株的特性,根据实际修复要求选择高效降解菌。采用HA 吸附态PAHs 筛选获得的Mortierella alpine JDR7,在低温条件下对HA 吸附态Phe、Pyr 和BaP 降解能力强,降解速率快,如果要在寒冷地区选择Mortierella alpine JDR7 作为固定化菌株,可添加HA 提高其修复效果。

北方寒冷地区土壤受冻融作用影响,结冻会导致大部分微生物休眠,但冷适应微生物对结冻环境却表现出较高抗性[8],如将游离的耐冷菌直接应用于PAHs 污染土壤,在实际修复过程中游离菌往往会面临土著菌的竞争、中间代谢产物的毒害、恶劣的环境条件等多重压力,导致有效降解菌存活率低、单位体积降解菌密度低、PAHs降解速率慢。为解决上述问题,可采用固定化微生物技术,以强化耐冷菌对冻融交替条件下PAHs 污染土壤的原位修复效果。

3 结论

高山被孢霉在低温条件下对Pyr 和BaP 均具有一定的降解能力,42d 降解率分别为68.13%和59.51%.加入HA能够提高其对Pyr 和BaP 的降解率,42d 分别提高至82.0%和71.8%,分别提高了13.8%和12.3%。

Michaelis-Menton 动力学方程分析表明,加入HA 能够提高高山被孢霉对Pyr 和BaP 的降解速率,第一周降解速率分别提高29.69%和32.93%。随后5 周,降解速率分别提高12.28%和10.69%。

一级反应动力学模型分析表明,土壤中Pyr 和BaP 经高山被孢霉处理后半衰期分别为16.6 d 和29.1d,添加HA后,半衰期缩短至13.9d 和17.9d。

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