短发卡RNA抑制人端粒酶逆转录酶表达对人脑胶质瘤细胞增殖及凋亡的影响

2012-03-10 02:19张宏顺马衍刚
山东医药 2012年17期
关键词:逆转录酶端粒酶胶质瘤

张宏顺,马衍刚

(1开滦医疗集团钱家营医院,河北唐山063301;2聊城市人民医院)

胶质瘤是最常见的颅内原发性恶性肿瘤,胶质瘤内端粒酶的上调或重新激活是其无限增殖、生长、侵袭转移所必需的,人端粒酶逆转录酶(hTERT)是端粒酶的限速酶[1]。RNA干扰(RNAi)是生物体内抑制特定基因表达的一种现象,而短发卡 RNA (shRNA)可更明确、高效、稳定地干扰目的基因的表达[2]。2010年6月~2011年7月,我们设计针对hTERT的 shRNA表达质粒,转染人胶质瘤细胞U251,旨在探讨RNAi治疗胶质瘤的可行性。

1 材料与方法

1.1 材料 pSilencer 1.0-U6载体(Line),pSilencer 1.0-U6 GAPDH Control(Circular),转染试剂Siport xp-1购自美国Ambion公司,T4DNA连接酶限制性内切酶(Promega公司),胶质瘤细胞株U251。

1.2 方法

1.2.1 寻找针对hTERT合适的靶序列 采用BLAST软件对选择的靶序列进行同源分析,排除抑制其他基因片段的可能。3'端加入终止信号TTTTTT,两端分别加入ApaⅠ和IcorRⅠ的酶切位点,并加入LOOP环,克隆入pSilencer 1.0-U6质粒U6启动子的下游。hTERT靶基因(NM003219,nucleotides 745~765)序列为 5'-AAACGTGCCTTCAGCTAAGAA-3'。oligoA:5'-ACGTGCCTTCAGCTAAGAATTCAAGAGATTCTTAGCTGAAGGCACGTTTTTTT-3';oligoB:5'-AATTAAAAAAACGTGCCTTCAGCTAAGAATCTCTT-GAATTCTTAGCTGAAGGCACGTGGCC-3'。oligoA、B各取2 μL,退火、连接,转化感受态大肠杆菌DH5α,提取质粒。酶切电泳鉴定,测序鉴定,扩增,-20℃备用。

1.2.2 质粒DNA/Siport xp-1转染U251胶质瘤细胞 脂质体与DNA比例为3 μL∶1 μg,分为空白对照组、hTERT干扰组、阴性质粒组,每孔细胞5× 105/L,分别于转染后1、3、5、7 d收集细胞,检验目的基因的活性。

1.2.3 hTERT基因表达检测 采用RT-PCR技术提取总RNA,使用两步法、RT-PCR试剂盒操作,引物由Invitrogen公司合成。hTERT上游引物5'-TCTACCGGAAGAGTGTCTGGAGCAA-3',下游引物5'-GCTCCCACGACGTAGTCCATGTTCA-3';GAPDH上游引物5'-ACCACAGTCCATGCCATCAC-3',下游引物5'-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3'。PCR产物用1%琼脂糖电泳分离鉴定,凝胶成像仪显像。

1.2.4 hTERT蛋白表达检测 采用Western blotting技术收集细胞3×105/L,用磷酸盐缓冲液、PBS洗涤3次后,提取蛋白,测OD值。配制标准蛋白浓度(50 μg/μL)加上样缓冲液,100℃5 min变性;取样品45 μL上样于10%SDS-聚丙烯酰氨凝胶进行垂直电泳,湿转63 min。NC膜依次放入封闭液、一抗、二抗,加入7 mL NBT/BCIP显色剂,显色1 h后转移于双蒸水中,扫描成像。

1.2.5 细胞的增殖及凋亡检测 配PI-DNA荧光染色液,收集细胞5×105/L,PBS洗涤3次,4℃、75%乙醇固定过夜;加PI-DNA荧光染色液1 mL,4℃避光30 min,置流式细胞仪上检测细胞的增殖周期及凋亡率。增殖指数(PI)=G2M+S/G0G1+S+ G2M。

1.2.6 统计学方法 采用SPSS10.0统计软件,均数以s表示,组间比较采用单因素方差检验(ANOVA)。P≤0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 酶切鉴定结果 酶切后,目的质粒被切为3 000 bp和350 bp的两条片段,测序结果显示,插入序列与设计的shRNA碱基序列完全一致。

2.2 RT-PCR检测结果 凝胶电泳图显示,在转染后第3、5、7天hTERT PCR产物(202 bp)条带明显变细,亮度下降(与对照组比较)。利用ImageJ分析软件分析证明,U251胶质瘤中的hTERT基因呈高表达。shRNA对U251胶质瘤hTERT基因表达有明显抑制作用(P<0.05),在第3、5、7天抑制率分别为(77.00±14.23)%、(73.81±13.52)%、(71.52 ±15.87)%。

2.3 Western blotting检测结果 显色扫描成像后,第3、5、7天可见hTERT条带变淡。ImageJ分析软件分析证明,U251胶质瘤中hTERT基因呈高表达。shRNA对U251胶质瘤hTERT的表达有明显抑制作用(P<0.05),在第3、5、7天抑制率分别为(71.51± 21.33)%,(72.00±17.69)%,(69.23±13.46)%。

2.4 胶质瘤细胞增殖及凋亡情况 与对照组相比,hTERT干扰组细胞进入S期出现障碍,停滞在G0/ G1期的细胞增多,凋亡细胞增加。各组不同时间细胞PI及凋亡率比较见表1。

表1 各组不同时间细胞PI及凋亡率比较(s)

表1 各组不同时间细胞PI及凋亡率比较(s)

注:与空白对照组、阴性质粒组同指标比较,*P<0.05

组别 第1天 第3天 第5天 第7天空白对照组PI 35.68±6.38 36.00±6.21 36.29±7.28 37.81±5.06凋亡率(%) 9.97±3.10 8.51±2.70 9.88±3.34 9.23±3.06阴性质粒组PI 37.73±7.19 35.09±4.60 37.85±8.83 38.68±5.98凋亡率(%) 8.90±3.70 7.12±2.97 10.40±4.10 10.71±2.91 hTERT干扰组PI 36.91±5.98 30.72±4.70 31.38±6.65 32.19±7.30凋亡率(%) 5.90±1.79*20.72±7.07*19.14±6.74*18.00±4.73*

3 讨论

脑胶质瘤具有高度侵袭性,在胶质瘤中端粒酶的阳性率随肿瘤恶性等级升高而相应增加[3]。研究表明,hTERT高表达能通过多分化刺激抑制细胞凋亡,导致细胞永生化。本实验证明,在胶质瘤细胞中,hTERT呈高表达,端粒酶的上调或重新表达、重新激活是胶质瘤无限增殖、生长、侵袭、转移所必需的,hTERT可作为基因治疗胶质瘤的理想靶点。

本实验将重组pSilencer1.0-U6-shRNA质粒转染胶质瘤细胞U251,结果显示,转染后第3天目的基因表达明显下降,直至转染后第7天,目的基因的干扰作用持续稳定。有学者曾使用反义技术、基因敲除技术、核酶切割技术成功地抑制了hTERT的表达,但都存在许多不足,因而限制了这些技术在实验和临床上的进一步应用[4]。shRNA是含siRNA的正义和反义链的一段序列,中间以7或9个 bp形成环状,使siRNA双链配对,在细胞内表达后可被DICER切割茎环产生双链siRNA,这样的shRNA载体能提供大量siRNA分子。所以shRNA干扰技术具有高度的特异性、普遍性,其沉默效率高、稳定性高、操作简单、重复性好[5]。

本实验检测了胶质瘤细胞的增殖周期分布与肿瘤细胞的凋亡率,结果显示,与对照组相比,目的基因干扰后的细胞进入S期出现障碍,停滞在G0/G1期的细胞增多。证明shRNA抑制了hTERT的表达,降低了端粒酶活性,抑制了细胞从G0期进入S期,激活了启动凋亡的某些基因,细胞凋亡增加。

RNAi的兴起使生物医学技术步入崭新阶段,“后基因组时代”对基因功能的分析离不开RNAi,因其沉默机制的广泛性、高效性和特异性,RNAi可能成为继单克隆抗体后又一次临床治疗手段的革命,目前探索RNAi治疗的研究多集中在感染性疾病和恶性肿瘤,随着shRNA特异、高效的细胞导入技术成熟,相信不久将看到shRNA成为一种新型药物而更多地用于临床治疗。

[1]陕声国,张端莲,余瑛,等.血管瘤组织中端粒酶逆转录酶基因表达与端粒酶活性的关系[J].中华实验外科杂志,2004,21(6): 661-663.

[2]马衍刚,傅强,冯晶军,等.脑胶质瘤组织中靶向乏氧诱导因子-1α shRNA表达载体的构建与鉴定[J].山东医药,2007,47 (15):30-31.

[3]刘平,卢亦成,夏放,等.脑胶质瘤端粒酶活性的表达及端粒长度的分析[J].中华神经外科杂志,2000,16(5):316.

[4]Dillin A.The specifics of small interfering RNA specificity[J].Proc Natl Acad Sci USA,2003,100(11):6289-6291.

[5]张峰,刘晔,刘三光,等.RNA干扰研究及其在肿瘤基因治疗中的作用[J].中华实验外科杂志,2006,23(3):381-382.

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