海洋假单胞菌PT-8胞外硒多糖的制备

2014-09-19 08:54江,叶红,王辉,王晗,肖
大连工业大学学报 2014年4期
关键词:壳聚糖单胞菌多糖

李 江,叶 淑 红,王 际 辉,王 晗,肖 珊

(大连工业大学 辽宁省食品生物技术重点实验室,辽宁 大连 116034)

0 引 言

海洋假单胞菌属于海洋细菌,由于其特殊的生存环境,使其产生的胞外多糖结构新颖,功能独特,活性丰富,是开发多糖类海洋功能食品的重要资源[1]。硒是生命必需的微量元素,它可以直接或间接地清除体内氧自由基,并且能够抑制肿瘤、心血管等疾病的发生[2]。但由于无机硒毒性强,应用受到限制。因此急需寻找一种生物活性高且毒性低的有机硒化合物。据报道,多糖硒的配合物作为补硒剂不仅具有稳定性和溶解性能,而且释放出硒后配体多糖不会对身体产生任何毒副作用[3]。刘振锋等[4]研究硒多糖具有抗肿瘤、抗氧化、提升机体免疫力、拮抗重金属蓄积、抗病毒等多种药理活性。国外对硒多糖的研究很少。本实验以海洋细菌假单胞菌PT-8发酵产胞外硒多糖,并对该硒多糖的流变性进行了研究。

1 实 验

1.1 材料与仪器

1.1.1 菌 种

假单胞菌PT-8,由作者所在实验室自深海海泥中分离、鉴定并保藏。

1.1.2 培养基

基础培养基(g/L):葡萄糖5,牛肉膏3,蛋白胨10,氯化钠5,琼脂1.5%~2%。

种子培养基(g/L):葡萄糖5,蛋白胨10,氯化钠5,牛肉膏3。

发酵培养基(g/L):蔗糖35,牛肉膏20,氯化钠55,K2HPO41,MgSO41,KH2PO40.5,MnSO40.5,pH 7.5。

1.1.3 试剂与仪器

主要试剂:苯酚、浓硫酸、三氯甲烷、正丁醇、无水乙醇等,均为分析纯。

主要仪器:真空冷冻干燥机、高速冷冻离心机、SNB-1数字式黏度计、紫外可见分光光度计。

1.2 实验方法

1.2.1 富硒实验

1.2.1.1 加硒浓度的确定

从斜面上挑取菌种,于含Na2SeO3量分别为0~50μg/mL的液体培养基中,根据所测得的生物量及硒多糖产量确定适宜硒浓度。

1.2.1.2 最佳加硒时间和培养时间的确定

通过测定耐硒菌生长曲线,确定最佳加硒时间和培养时间,测发酵液在600nm处吸光度值,用苯酚-硫酸法测定多糖含量,并绘制曲线。

1.2.2 硒多糖提取纯化

提取粗多糖:种子培养基→发酵培养基→发酵液离心,取上清→醇沉→离心→溶解→Sevag法除蛋白3次→醇沉→离心→溶解→透析→冷冻干燥→粗多糖。用苯酚-硫酸法测定多糖含量。

纯化粗多糖:粗多糖溶液→DEAE-52,NaCl梯度洗脱(体积流量0.5mL/min)→浓缩、透析、冻干→Sephadex G-100,蒸馏水洗脱→浓缩、透析、冻干→纯品多糖[5]。

1.2.3 富硒多糖含硒量的测定

采用石墨炉原子吸收法测定富硒多糖中的硒含量[6]。

1.2.4 富硒多糖流变性

1.2.4.1 浓度对多糖溶液黏度的影响

将Se-EPS和EPS配制成质量分数为0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、0.5%、0.6%、0.7%、0.8%、0.9%、1.0%的多糖溶液,各取30mL,用SNB-1数字式黏度计测其在室温、40r/min条件下的黏度。

1.2.4.2 剪切力对多糖溶液黏度的影响

配制 0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、0.5%、0.6%、0.7%、0.8%、0.9%、1.0% 的 Se-EPS 和EPS溶液,各取30mL,室温下依次测定每种质量分数多糖溶液在转速为30、40、50、60r/min下的黏度。

1.2.4.3 温度对多糖溶液黏度的影响

配制8份质量分数为1%的Se-EPS和EPS溶液,分别在30~100℃恒温水浴锅中保温20min,冷却至室温,测定其在40r/min下的黏度。

1.2.4.4 pH对多糖溶液黏度的影响

配制9份质量分数为1%的Se-EPS和EPS溶液,分别将pH 调至3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0、11.0,测定其在30℃、40r/min条件下的黏度。

2 结果与讨论

2.1 加硒量和加硒时间的确定

2.1.1 加硒量的确定

如图1可知,假单胞菌PT-8的吸光值随着硒浓度的增加而降低,因此硒浓度过高将抑制菌体生长,故选取Na2SeO3添加量为20μg/mL。

图1 硒质量浓度对生长量和硒多糖产量的影响Fig.1 The effect of concentrations of Se on growth and yield of Se-EPS

2.1.2 加硒时间的确定

如图2所示,耐硒菌在4~14h处于对数期,至30h到达了最大,24~36h可认为是菌株生长的稳定期,42h后开始进入衰亡期。从转化率和生产周期考虑,选择第6h添加硒,培养时间为48h。硒多糖产量为7.28g/L。

图2 PT-8菌株的生长曲线Fig.2 The growth curve of PT-8strain

2.2 富硒多糖的硒含量

由表1可知添加Na2SeO3为20~40μg/mL的Se-EPS的含硒量相近,浓度高抑制菌体生长。因此Na2SeO3质量浓度为20μg/mL最佳。

表1 不同质量浓度Na2SeO3所得Se-EPS的含硒量Tab.1 The selenium amount in Se-EPS of Na2SeO3 concentration

2.3 富硒多糖的流变性

2.3.1 浓度对黏度的影响

在剪切速率为40r/min时测定Se-EPS和EPS分别在不同质量分数下多糖溶液的黏度,结果如图3所示。多糖溶液的黏度会随着浓度的升高而升高,而且硒多糖黏度始终低于多糖浓度。可能是由于是多糖的羟基和氨基硒化后,分子间由氢键产生的作用力变小使硒多糖的黏度变小[7]。

图3 不同质量分数下胞外硒多糖和多糖黏度Fig.3 The viscosity of Se-EPS and EPS in different mass fractions

2.3.2 剪切力对黏度的影响

测定Se-EPS和EPS依次在相应质量分数不同剪切速率下黏度,结果如图4、5所示。该硒多糖和多糖均为非牛顿流体,且为假塑性流体。同时发现硒多糖的黏度小于多糖黏度,可能是由于该多糖在硒化反应过程中分子发生裂解,分子质量变小使得黏度变小[8]。

2.3.3 温度对黏度的影响

在相同剪切速率40r/min、质量分数为1%的Se-EPS和EPS溶液,在不同温度下的黏度测定结果如图6所示。随着温度的升高,Se-EPS和EPS溶液的黏度逐渐降低,表明高温会破坏多糖原有的高级结构。

图4 不同剪切速率下胞外硒多糖的黏度Fig.4 The viscosity of Se-EPS at different shear behavior

图5 不同剪切速率下胞外多糖的黏度Fig.5 The viscosity of EPS at different shear behavior

图6 不同温度下胞外硒多糖和多糖黏度Fig.6 The viscosity of Se-EPS and EPS at different temperature

2.3.4 pH对黏度的影响

剪切速率为40r/min、质量分数为1%的Se-EPS和EPS溶液在不同pH下黏度的变化如图7所示。溶液的表观黏度值在酸性时最大,推测该多糖是酸性多糖[9]。

图7 不同pH下胞外硒多糖和多糖黏度Fig.7 The viscosity of Se-EPS and EPS at different pH

3 结 论

海洋假单胞菌PT-8发酵产胞外硒多糖与胞外多糖产量和流变性进行了比较。硒多糖经醇沉、脱蛋白、冻干得到产量为7.28g/L,远远高于胞外多糖的产量[10]。其中硒多糖纯度为79.67%,并且该多糖中的硒为256.7mg/kg。同时测定了该硒多糖的黏度。孙兰萍等[11]研究发现硒化后的多糖黏度降低是由于壳聚糖的羟基和氨基硒化后,分子间由氢键产生的作用力变小使硒化壳聚糖的黏度变小;另一个原因是壳聚糖在硒化反应过程中分子发生裂解,分子质量变小使得黏度变小。本实验也发现硒多糖的黏度低于多糖,推测可能是由于硒化后硒与多糖的结合是通过与氨基和羟基结合,分子间由氢键产生的作用力变小使硒多糖的黏度变小,也可能是多糖分子发生裂解。其具体的结合方式,有待于进一步研究。

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[5]XU Chunlan.Preparation,characterization and immunomodulatory activity of selenium-enriched exopolysaccharide produced by bacteriumEnterobactercloacaeZ0206[J].Bioresource Technology,2008,2009(100):2095-2097.

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