亚临界水提取固相分散萃取净化测定人参中皂苷含量

2024-03-05 03:33李建民莫慧娟沈海波康卷娟刘善鑫张连钢
食品工业 2024年1期
关键词:提取液皂苷人参

李建民,莫慧娟,沈海波,康卷娟,刘善鑫,张连钢

甘肃省嘉峪关市食品药品和医疗器械检验检测中心(嘉峪关 735100)

人参是一种多年生的草本植物,分布于我国东北三省地区[1],被视为极具药用价值的植物,中医学认为其具有非常好的补益作用[2]。这是因为人参所含的多糖、人参皂苷等独特的功效物质[3]。人参皂苷是一种固醇类化合物,具有增强体质、延缓衰老的功效[4-5]。由于人参的独特功效,市场上出现很多人参加工产品,如人参口服液、冻干人参、人参蜜片、人参蜜饯等[6]。然而由于人参产量较低,品质参差不齐,所以高品质的人参产品价格居高不下,不法商家以次充好。所以严格控制人参制品的品质尤为重要[7]。

主要采用的检测方法有分光光度法,需要大孔树脂层析柱净化,香草醛显色测定[8]。该方法可检测总皂苷含量,需要的检测条件较低,但是该方法批间均一度很差;大孔树脂对人参皂苷的吸附能力有限,试验结果的稳定性和准确性很难得到保障。液相色谱法检测的自动化程度高,能检测不同结构的人参皂苷[9-10],是一种较理想的检测方法,其样品前处理方法为乙醇水溶液回流提取、甲醇回流提取[11]、超声辅助萃取[12-13]等,这对人参提取物制品中皂苷提取效率超过98%;但对人参、人参切片、人参蜜饯等植物基质样品中皂苷的提取效率较低,由于植物细胞壁的保护导致,所以也导致最终检测结果的不稳定性。因此,建立一套高效提取,净化前处理样品,并液相色谱兼容的检测方法很有必要。

亚临界水是处于水的沸点以上,并且体系压力使水仍保持液体状态的水。其具有很多优秀的特点,如亚临界水在实际工作中,可以依靠控制温度范围,使亚临界水呈现不同极性,有利于提取特殊极性范围的目标物[14]。另外一个显著的特点是其拥有较高的离子积,即高浓度的氢离子和氢氧根离子。温度升高到200~300 ℃时,亚临界水中水分子也会电离产生更多的氢离子和氢氧根离子,离子积可达10-11,较常温常压下提高1000倍。更容易与一些路易斯酸碱性物质结合,提高萃取效果[15-16]。同时随着温度的升高,水分子的氢键作用会减弱,氢键数量也会减少,亚临界水的黏度和表面张力随着温度的升高而降低,较低的黏度和表面张力有利于物质的传递和渗透,从而提高提取效率,基于亚临界水的诸多特性,可以考虑用于人参及其制品中人参皂苷的提取工作中。试验结合亲水亲脂材料进行固相分散萃取净化[17-18],液相色谱检测,建立高效、准确、稳定的人参皂苷检测方法,以期为人参及人参制品的开发、质控提供良好基础。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

人参样品(通化绿舒堂贸易有限公司);乙醇(色谱纯,北京百灵威科技有限公司);甲醇(色谱纯,北京百灵威科技有限公司);人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rg1(标准品,德国Dr.Ehrenstorfer公司);C18填料、PLS填料、PSA填料、大孔树脂(分析纯,杭州微米派科技有限公司)。

1.2 仪器与设备

液相色谱仪(安捷伦1260型,配二级管阵列检测器,安捷伦科技有限公司);离心机(RX-II型,天美中国科学仪器有限公司);亚临界水提取系统(5~100 L,鲲华生物技术有限公司)。

1.3 试验方法

1.3.1 人参及其制品的样品制备

干燥的人参样品:将样品粉碎过0.300 mm(50目)筛,得到粉状筛下物,筛上物继续粉碎研磨,至全部样品通过50目筛。

新鲜人参样品:将样品粉碎,在均质器中10000 r/min,均质匀浆1 min。

人参蜜饯样品:将样品切成小于5 mm的小块,放入冻干机中,真空冷冻干燥6 h,样品变得疏松,质地变脆。此时将样品粉碎过0.300 mm(50目)筛。

人参提取物保健品,固体样品,粉碎即可;液体样品可直接使用。

1.3.2 亚临界水对人参样品提取压力和温度条件优化

对亚临界水提取肉苁蓉的压力,温度条件进行筛选优化。分别以200,300,400,500和600 kPa这5个压力条件以及150,170,190,210,240,270和300 ℃这7个温度条件,做35组正交试验。每份提取液,检测其中6种人参皂苷化合物含量,以其含量高低,选择最优的提取压力和提取温度作为样品前处理提取条件。

1.3.3 亚临界水对人参样品提取时间优化

在最佳提取温度和压力条件下,分别以1,3,5,7和10 min这5个不同提取时间对同一份人参样品进行提取。每份提取液,检测其中6种人参皂苷化合物的含量,以其含量高低,确定亚临界水对人参样品最佳提取时间。

1.3.4 亚临界水提取

称取5 g制备好的人参样品,精确到百分位。将样品全部放入亚临界水提取反应釜中,加入100 mL蒸馏水,密封好反应釜提取系统,在1.3.2所优化的条件下进行亚临界水提取。提取时间为1.3.3所优化的时间。得到提取液,待净化。

1.3.5 净化材料选择

根据DB22-T 1668—2012《人参食品中人参总皂苷的测定分光光度法》中方法规定使用大孔树脂,自装填柱层析对样品进行净化,检测结果回收率不理想,所以选择十八烷基键合填料(C18)、聚乙烯吡咯烷酮(PLS)、氨基填料(PSA)、大孔树脂作为固相填料。采用固相分散萃取的方式,吸附1.3.4步骤中得到提取液中的人参皂苷。操作步骤:取25 mL提取液于50 mL离心管中,平行做4组试验,分别加入C18、PLS、PSA、大孔树脂各1.0 g。涡旋振荡5 min,按5000 r/min离心3 min。弃去全部上清液,得到离心管底部白色沉淀。向其中加入1.0 g无水硫酸钠和5.0 mL甲醇,涡旋振荡2 min,得到样品待测液。分别测定上清液,待测液。以待测液中目标物含量确定有需要的吸附材料。

1.3.6 吸附时间和解析体积的优化

固相分散萃取需要一定的时间达到吸附平衡。对吸附材料进行解析也需要一定体积适当溶剂确保解析完全。选择1,2,3,4,5,7和10 min这7个不同时间对样品进行提取;选择1.0,2.0,3.0,4.0,5.0,7.0和10 mL这7个不同体积甲醇对吸附材料进行解析。以待测液中目标物含量确定吸附和洗脱条件。

1.3.7 提取液净化

将PLS作废固相填料。向25 mL样品提取液中加入1.0 g PLS,涡旋振荡5 min,按5000 r/min离心3 min。弃去全部上清液,得到离心管底部白色沉淀。向其中加入1.0 g无水硫酸钠,5.0 mL甲醇,涡旋振荡2 min,得到样品待测液。

1.3.8 样品测定

将待测液经过0.22 μm滤膜进入液相色谱检测。色谱条件:色谱柱为ODS C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相为甲醇-水溶液,检测波长202 nm;流速1.0 mL/min;柱温30 ℃;进样量20 μL。分别称取人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rg于10 mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容至刻度线,摇匀待用。用甲醇稀释至1.0~100.0 μg/mL的标准系列溶液。以浓度为横坐标,峰面积为纵坐标,得到校准曲线。含量按式(1)计算。式中:X为目标物含量,g/kg;c为由标准曲线校准得到的样品液中目标物含量,μg/mL;V为样品液体积,500 mL;m为样品质量,10.0 g;1000为毫克与微克的换算系数。

2 结果与讨论

2.1 亚临界水提取人参样品的压力和温度条件优化试验结果

35组棋盘试验结果以曲面图表示,如图1所示。

图1 不同提取压力和温度下提取液中人参皂苷含量

亚临界水提取人参样品,温度和压力升高,有利于提高亚临界水提取人参皂苷的效率。得到提取液中人参皂苷含量升高。压力≥400 kPa且温度≥240℃时,Rg1、Re、Rb1达到最大提取效率;压力≥400 kPa且温度≥190 ℃时,Rc、Rd、Rb2达到最大提取效率。压力≥600 kPa且温度≥210 ℃时,Rg1、Re、Rb1达到最大提取效率;压力≥500 kPa且温度≥170 ℃时,Rc、Rd、Rb2达到最大提取效率。综合考虑,反应体系中压力增加带来的成本增加远高于升高温度的成本,所以,考虑在完全提取的前提下,压力和温度折中的条件为最有提取条件,所以最终提取压力400 kPa、提取温度240 ℃。6种不同人参皂苷需要的提取温度和压力存在差异:一是因为每种皂苷在样品中含量不同导致,含量较多的3种皂苷Rg1、Re、Rb1,不容易被提取,需要的条件更苛刻;二是因为每种皂苷结构差异,亚临界水对不同结构的物质提取效率和条件也有所差异。

2.2 亚临界水提取人参样品所需时间优化

不同提取时间对提取效率的影响如图2所示。

图2 不同提取时间6种人参皂苷含量

随着提取时间增加,亚临界水对人参皂苷的提取效率也随之增加。但提取时间超过5 min时,提取效率到达最大效果,继续增加提取时间只会增加提取成本,皂苷含量不再增加。所以亚临界水提取时间选择5 min。由于亚临界水低极性和高离子积的特点,可以提高对目标物的溶解度。同时,在高压环境下,人参样品很容易被破坏,内部所包含的目标物能快速溶解到亚临界水中。所以整个提取过程可在短时间内完成。相比文献[11,13]中记载的1 h和30 min,提取效率有大幅提高。所以亚临界水用于人参皂苷的提取试验中,无需有机试剂,短时间内可以完成提取过程,更加快捷稳定,有利于后续净化和检测试验的进行。

2.3 固相分散萃取材料的选择

不同的萃取填料对人参皂苷的吸附和解析效率存在很大差异。根据1.3.5步骤得到的试验结果如表1和表2所示。

表1 不同填料对人参皂苷的吸附效果影响

表2 不同填料对人参皂苷的解析效果影响

由表1可知,经C18填料、PSA填料、大孔树脂吸附残留的上清液中仍然含有大量的目标化合物。而PLS填料吸附后上清液残留量明显低于3种填料。说明PLS在短时间,简单涡旋振荡操作条件下,即可对皂苷化合物到达高效率吸附。由表2可知,利用5 mL甲醇对吸附后的C18填料、PSA填料、大孔树脂填料进行解析,无法完全解析,有部分目标物仍然残留在填料中,无法满足对化合物检测回收率要求,而PLS填料在少量有机溶剂条件下,即可完全解析。完全满足后续检测要求。这是因为,C18填料和大孔树脂对大部分有机化合物都有吸附效果,但吸附效率较低,需要在柱层析的条件下,多次吸附,才能达到吸附平衡。同理,在解析过程中,仍需要多次洗脱才能达到最优效果。所以该填料不适合作为固相分散萃取的填料。PSA填料对糖类,苷类等化合物有高效吸附特性,但是必须在乙腈条件下吸附效果才能达到最高,所以不适用于本试验亚临界水条件下的分散萃取。而PLS填料对水溶液中的含羟基的化合物有非常强的吸附能力。正好与试验中采用的亚临界水条件有极好的兼容性。

2.4 6种人参皂苷色谱行为

亚临界水提取,PLS固相分散萃取,高效液相色谱检测人参样品中6种皂苷,色谱图如图3所示。

图3 6种皂苷液相色谱图

由图3可知,6种保留时间分别为4.191,4.687,6.006,6.943,8.036和9.462 min,此液相色谱仪空气保留时间为1.515 min。色谱峰理论塔板数按式(2)计算,分离度(R)按式(3)计算。

式中:tR为目标色谱峰的调整保留时间,即目标峰保留时间与空气保留时间之差,min。W1/2为半峰宽。

式中:tRi为目标色谱峰的调整保留时间,min;Wi为目标色谱峰拐点峰宽。由数据可以计算出色谱峰的理论塔板数和分离度。计算结果如表3所示。

表3 目标物色谱峰理论塔板数和分离度计算结果

由表3可知,Rg1、Re、Rc、Rb1、Rb2、Rd的理论塔板数分别为5622,5924,10532,12559,15571和22392,液相色谱要求理论塔板数大于5000,所以6种目标物峰形对称,满足色谱分离要求。分离度均大于1.5,所以目标物色谱峰分离度良好,满足色谱分离要求。

2.5 检测方法的回收率和精密度

在人参样品中加入6种标准物质,并做3组平行样品。验证方法回收率和精密度,结果如表4所示。

表4 实际样品回收率及SRSD值试验结果

由表4可知,该方法6种目标物的回收率分在90.59%~99.06%。SRSD≤3%,证明该方法结果准确、稳定,满足检测要求。由于本方法采用亚临界水提取目标物,PLS填料分散萃取的方法处理样品。相比文献[11]比色法和文献[13]液相色谱法回收率95%~99%相当,试验方法操作更简单,步骤更少,导致目标物散失的因素更少,目标物分子适中保存在样品提取液中,没有加热,蒸馏,转移,萃取等影响检测结果准确性的试验步骤。所以最终结果完全满足准确度和精密度要求。

2.6 检测方法检测浓度范围和检出限

以线性范围评价该方法的检测浓度范围,当3倍信噪比对应的浓度为仪器检出限,以最低检出限评价该方法灵敏度,结果见表5所示。

表5 线性范围及方法检出限

由表5可知,6种目标物均有较宽的线性范围,5~500 μg/mL的线性范围,对应0.02~4.0 g/kg的检测范围,满足各类样品中人参皂苷的检测。由于试验方法采用高倍浓缩,所以方法检出限数值很低,满足微量检测要求。对部分皂苷含量较少的样品液适用。

2.7 实际样品检测

利用所建立的方法,对新鲜人参,人参切片,西洋参含片,人参蜜饯样品进行检测。检测结果如表6所示。

表6 实际样品检测结果

3 结论

亚临界水与样品在料液比1∶20(g/mL)、压力400 kPa、温度240 ℃条件下,仅需要提取5 min,能将人参样品中人参皂苷提取到提取液中,较超声提取,回流提取有明显优势,同时亚临界水提取更加绿色、环保。在此基础上利用PLS填料对提取液中目标物进行分散萃取,将目标物快速高效的富集在填料上。用少量有机试剂解析,PLS填料对水溶液中的人参皂苷具有极强的吸附能力,而甲醇对PLS中的人参皂苷也有极强的洗脱能力。这样的现象确保该样品前处理方法的快捷、简便、高效、准确、稳定等特性。试验所建立的亚临界水提取,PLS固相分散萃取富集净化处理人参样品,通过液相色谱检测方法具有良好的准确性,稳定性、灵敏度和检测范围。试验操作步骤简单,短时间内可完成检测试验得到检测结果,适用于各类含有人参皂苷的样品。该方法的建立也为亚临界水在检测领域的应用拓宽思路,也为固相分散萃取的应用提供一定试验基础。

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