高质量加工番茄基因组DNA提取方法的改进

2011-06-08 13:05楠,谢
湖南农业科学 2011年15期
关键词:戊醇酚类缓冲液

张 楠,谢 放

(兰州交通大学化学与生物工程学院,甘肃 兰州 730070)

目前选育高品质植物品种主要采用的是分子标记辅助育种方法,因而怎样获得高质量的基因组DNA用于后续的分子标记将显得非常关键。番茄中含有较多的多糖和其他次生代谢产物(酚、酯、萜、色素等)[1],这给高质量的DNA提取带来较多的困难。尤其是多糖、色素、蛋白质成分是影响DNA纯度最常见的问题。如何做到在去除污染物又能相对保持高的产量的同时,对大批量的模板进行提取,一直是像番茄这类含多糖、色素和盐类物质较多的植物所探讨的问题。

在加工番茄分子标记辅助育种时,多采用CTAB法[2]、SDS法及DNA试剂盒[3-4]等提取番茄DNA,效果均不太理想。通过试验比较多种提取方法,得到一种适用于提取大批量加工番茄DNA的方法——改进CTAB法。通过此法克服了番茄中富含多糖、蛋白质、酚和色素的影响,所得DNA通过凝胶电泳和分子标记均获得了满意的结果,可以将此方法在富含上述物质的植物中推广使用。

1 材料与方法

1.1 试验材料

加工番茄叶片于2010年7月采摘于兰州交通大学科技园试验田。将采摘的幼嫩叶片和老叶片分别装入塑料袋置于冰盒中带回实验室,置于-20℃备用。

1.2 药品与试剂

引物序列:随机引物S636(GGGATATCGC),ISSR 引物 855(ACACACACACACACACYT)上述引物由上海生工生物工程公司合成。

CTAB 提取液:含 2%CTAB,1.4 mol/L NaCl,0.2%β-巯基乙醇,20 mmol/L EDTA,100 mmol/L Tris-HCL pH 值 8.0,PVP,10 mg/mL RNase;TE 缓冲液:含 10 mmol/L Tris-HC1,l mmol/L EDTA(pH 8.0);饱和酚∶氯仿∶异戊醇(V∶V∶V)=25∶24∶1,氯仿︰异戊醇(V∶V)=24∶1;50×TAE 缓冲液:1 L 缓冲液中含有242.0 g Tris碱,57.1 mL冰乙酸,200 mL 0.5 mol/L EDTA,pH 值 8.0。

1.3 仪器

TGL-20M高速冷冻离心机(湖南湘仪);紫外分析仪(北京六一仪器厂);DYY-6C型电泳仪(北京六一仪器厂);PCR扩增仪(Biometra);HH-2恒温水浴锅(国华电器有限公司);UVP凝胶成像系统(USA)。

1.4 DNA的提取

(1)取番茄叶片2~3片放入研钵中,加入液氮,迅速研磨成粉末,称取约0.2 g粉末,快速装入5 mL离心管中;(2)加入850 μL预热CTAB提取缓冲液,65℃水浴40 min,冷却至室温;(3)加入等体积的Tris-饱和酚:氯仿:异戊醇(V25∶V24∶V1)轻震摇匀后,4℃、12 000 g离心 10 min;(4)取上清液,加入10%体积3 mol/L NaAc溶液摇匀后再加入等体积的氯仿-异戊醇(V24∶V1)轻震摇匀后,4℃、12 000 g离心10 min;(5)取上清液,加入2倍体积的冰冻无水乙醇,冰浴20 min,用无菌牙签将絮状物挑出放入新管;(6)70%乙醇(体积分数)漂洗沉淀两次,37℃烘干,溶于60 μL TE缓冲溶液中,4℃保存备用。

1.5 DNA的检测

从提取的DNA液中吸取10 μL,用TE溶液定容至2 000 μL,在紫外分光光度计下测OD260,OD280值,并计算OD260/OD280,跟据公式 [DNA浓度(μg/mL)=50×OD260×稀释倍数)]计算 DNA 浓度;称取0.2 g琼脂糖加人25 mL的1×TAE缓冲液,经微波炉加热溶解,待其不烫手时加入0.2 μL EB(10 mg/mL)即用含EB的0.8%琼脂糖凝胶电泳鉴定提取的 DNA,每孔点样 4 μL(3 μL DNA 样品+1 μL 上样缓冲液),电压80V,电泳40 min。

1.6 PCR扩增

采用25 μL扩增体系,以随机引物S636和ISSR引物855分别作为单引物,随机扩增体系组成参见杨永超等[5]的方法,ISSR扩增体系参见朱为民等[6]的方法。扩增产物经1.2%琼脂糖凝胶电泳检测,5 V/cm,1 h。

2 结果与分析

2.1 DNA溶液吸光值、浓度及电泳检测

当OD260/OD280值在1.7~1.9时说明所提取的DNA质量较好,比值小于1.7可能有蛋白污染,比值大于2.0,说明有RNA污染或DNA已经降解。幼嫩叶片和老叶片所提取DNA溶液经紫外分光光度计测定260 nm和280 nm处的吸光值并计算OD260/OD280,其值在1.75~1.91之间,计算得DNA浓度为在40~80 ng/L,并结合电泳图谱得出所提DNA纯度较高,RNA和蛋白质含量较少,无降解,根据计算将DNA浓度调整为20 ng/μL,于-20℃贮存备用。

图1 总DNA电泳检测

2.2 PCR扩增结果

采用RAPD随机引物和ISSR引物对随机提取的两个老幼叶片的DNA模版进行PCR扩增然后进行电泳检测(图2、图3)。从结果来看采用两种分子标记均能扩增出清晰、无拖尾的电泳图谱,说明用此法所提取的加工番茄DNA在结构上具有完整性;加样口无亮带,说明所得的DNA溶液较纯,无其他糖类、酚类、色素等杂质,适合RAPD和ISSR等分子标记试验。

图2 用RAPD引物对DNA模板质量进行PCR扩增检测

图3 用ISSR引物对DNA模板质量进行PCR扩增检测

3 讨论

植物组织在生长中随着生长阶段的不同所富含的多糖、酚类和色素含量各不相同[1]。本研究通过提取出番茄幼嫩叶片和老叶片中的DNA经紫外、电泳和PCR扩增检验表明纯度高、无杂质存留,DNA片段完整,不需进一步纯化即可用于分子标记试验。本法与以往的提取方法相比,具有以下特点:第一,采用冷藏和液氮研磨的方式最大程度的避免了叶片细胞中DNA的降解,保证了所提DNA的质量和片段的完整性。第二,在提取缓冲液中加入防止酚类氧化与易与酚类结合的试剂β-巯基乙醇和PVP(聚乙烯吡咯酮),防止了酚类与DNA的结合。第三,采用tris-饱和酚-氯仿-异戊醇,氯仿-异戊醇相结合的抽提法更有效地去除了蛋白质和酚类的残留。第四,通过加入3 mol/L NaAc能明显溶解脂溶性色素和多糖,随后经冰冻无水乙醇沉降和70%乙醇多次洗涤能有效达纯化DAN的目的。同时,应用此法也成功提取了西瓜和甜瓜的DNA。此外,可采用老叶片进行DNA的提取,本法对于在植物分子标记辅助育种过程中获得种子很少的品种,解决了传统方法通过黄化苗和幼苗提取DNA所面临材料短缺的问题。

[1] 霍 锋,张 泷,张 娅.DNA分子标记技术在药用植物鉴别中的应用[J].安徽农业科学,2010,(8):4089-4091.

[2] 路 盼,康立功,许向阳,等.3个番茄品种及其6份亲本材料指纹图谱的构建[J].中国瓜菜,2010,23(3):6-10.

[3] 高永利,李景富,王傲雪,等.番茄RAPD反应体系的优化[J].东北农业大学学报,2007,38(2):175-180.

[4] 董坦坦,姬长英,周 俊,等.成熟番茄的图像识别及其位姿的获取研究[J].江西农业学报,2009,21(8):152-155.

[5] 邓正春,肖清平,覃事玉,等.影响番茄杂交制种产量的因素分析[J].湖南农业科学,2010,(7):21-22,25.

[6] 朱为民,王曙霞,杨少军,等.番茄ISSR-PCR反应体系的优化[J].上海农业学报,2007,23(3):5-8.

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