烟草烟雾暴露对哮喘大鼠气道CCR6 mRNA及其蛋白表达的影响

2012-11-27 05:27韩小花杜永成张新日
中国比较医学杂志 2012年12期
关键词:烟雾粒细胞气道

韩小花,杜永成,张新日,李 毅

(1.山西省人民医院呼吸科,太原 030001;2.山西医科大学第一医院呼吸科,太原 030001)

支气管哮喘(bronchial asthma)是一种常见的慢性呼吸系统疾病。吸烟与哮喘关系密切,长期吸烟可增加哮喘发作的严重度和病死率。吸烟可改变哮喘患者气道炎症的特点,导致哮喘患者激素治疗效果更差,肺功能下降更快。免疫-炎症机制是近几年支气管哮喘研究的热点,趋化因子的作用亦受到了广泛关注。CCR6是趋化因子CCL20唯一的受体,Lukacs NW[1]和 Bracke KR[2]等人的研究表明CCR6不仅在哮喘气道粘膜免疫中的作用非常重要,而且对于烟草烟雾暴露导致的肺部炎症具有重要作用。本文通过观察烟草烟雾暴露对哮喘大鼠气道CCR6 mRNA及蛋白表达的影响,进一步探究吸烟哮喘气道炎症发生的免疫学机制,以期为临床治疗哮喘寻找新的靶点。

1 材料和方法

1.1 实验材料和设备

6~8周龄清洁级健康雄性Wistar大鼠〔山西医科大学实验动物中心提供,合格证号 SXCK(晋)2009-0001〕40只,平均体重(200±20)g。卵白蛋白(OVA)购自美国 Sigma公司,实验用香烟为湖南中烟工业公司生产的芙蓉牌过滤嘴香烟 (烟碱1.0 mg/支,焦油12.0 mg/支)。兔抗大鼠 CCR6多克隆抗体试剂盒及SABC(兔IgG)试剂盒均购自北京博奥森生物技术有限公司;DAB显色剂购自武汉博士德生物工程有限公司;MIAS-2000医学图像分析系统为四川川大智胜软件股份有限公司产品。第一链cDNA合成试剂盒(RevertAidTMFirst Strand cDNA Synthesis Kit K1622)为加拿大Permentas公司产品;实时荧光定量 PCR仪(Roche LightCycler1.0)为瑞士Roche公司产品。

1.2 方法

1.2.1 动物分组与模型制备:40只大鼠按照随机数字表法分为4组:对照组、烟雾暴露组、哮喘组和哮喘+烟雾暴露组,每组10只。参照文献制备哮喘模型[3]:于第 1天和第8天以 10%OVA 1 mL、氢氧化铝100 mg腹腔注射致敏,第14天后置于透明密闭容器中给予1%OVA溶液60 mL雾化吸入激发,中等雾量,1次/d,每次30 min,每周5次,以大鼠出现呼吸加快、口唇发绀、站立不稳等表现为激发成功,连续激发8周。对照组:以生理盐水代替 OVA腹腔注射,第14天后给予生理盐水雾化(60 mL)8周。参照许三林等[4]自制实验性大鼠被动吸烟装置,吸烟室大小(100×80×60)cm。烟雾暴露组:前期制备同对照组,生理盐水雾化30 min后给予大鼠被动吸烟1次,每次吸烟10支,大约1 h,每周吸烟5 d,共吸烟8周。哮喘 +烟雾暴露组:前期制备同哮喘组,从吸入1%OVA开始,每日于雾化激发30 min后,给予被动吸烟,共8周,吸烟方法和时间同烟雾暴露组。

1.2.2 标本采集:末次雾化激发24 h内,25%乌拉坦4 mL/kg腹腔注射麻醉动物,行支气管肺泡灌洗,暴露气管进行插管,3 mL PBS液反复冲洗3遍,回收的灌洗液离心(1 500 r/min)留取重悬细胞沉淀,行白细胞计数,同时涂片用于HE染色进行细胞分类计数。留取右肺组织,放入DEPC处理过的冻存管中-80℃冰箱中冻存,用于 RT-PCR法检测。左肺以中性甲醛固定24 h,常规石蜡包埋、切片,用于免疫组织化学染色、苏木精-伊红(HE)染色。

1.2.3 BALF细胞计数及分类:大鼠支气管肺泡灌洗液行白细胞计数、HE染色及细胞分类计数。

1.2.4 Rear-time PCR检测大鼠肺组织CCR6 mRNA的表达水平:引物由上海生工生物科技有限公司合成。CCR6引物序列:(上游引物)5'-AACATGGTCCTCCTCGTGAC-3',(下 游 引 物)5'-TACAACACGGGGTTGAGACA-3',扩增片段大小:137 bp;设β-actin做内参照物。取-80℃保存的肺组织,提取总 RNA,再合成第一链 cDNA,置 -20℃冰箱备用。采用SYBR green荧光染料法反应45个循环,整个过程收集荧光,使各组内每样本与内参扩增效率相同,采用 2-ΔΔCt法[5]计算样本的原始拷贝数,分别扩增 CCR6 mRNA和 β-actin。利用相应软件获得各组样本与内参β-actin相对应的扩增曲线,读取样本 Ct(cycle threshold)值(即在 PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经过的扩增循环次数),计算ΔCt值(各样本测定基因与内参基因 Ct值的差值)和 ΔΔCt值(其余样品的ΔCt值和对照样本相应基因的 ΔCt值之差),最终得出2-ΔΔCt值(相对于参考因子基因表达的倍数)以获得四组间CCR6mRNA的相对定量比较,即以正常对照组为参照,其余各组CCR6mRNA相对表达量用参照组的 2-ΔΔCt倍表示。

1.2.5 免疫组织化学染色检测大鼠气道CCR6蛋白的表达:石蜡切片厚4 μm,采用过氧化物酶标记的链霉菌抗生物素蛋白-过氧化物酶连结法(SABC)测定。按照 SABC试剂盒说明书进行操作,CCR6一抗稀释浓度为1:100,阳性表达为支气管上皮细胞胞膜和胞浆内有棕黄色颗粒。切片结果均采用MIAS-2000医学图像分析系统检测,检测每支细支气管上皮细胞的平均光密度(A值),取5支完整细支气管的平均值代表该切片CCR6蛋白表达的相对含量。

1.3 统计学方法

2 结果

2.1 大鼠肺组织病理学改变

肺组织HE染色:对照组肺泡及细支气管形态、结构正常,支气管纤毛排列整齐,管腔规则,仅见少量炎性细胞浸润,基底膜较薄;烟雾暴露组支气管纤毛柱状上皮细胞脱落或变性,气道壁增厚,气道壁和肺组织可见巨噬细胞、淋巴细胞和中性粒细胞等炎性细胞浸润;哮喘组气道壁和肺组织可见淋巴细胞、嗜酸粒细胞等炎性细胞浸润,黏膜皱褶增多,部分支气管上皮坏死、脱落,气道壁增厚,管腔狭窄;哮喘+烟雾暴露组肺泡腔不规则扩大,肺泡间隔变薄或断裂,气道壁明显增厚,大量淋巴细胞、嗜酸粒细胞及中性粒细胞浸润(图1~4见彩插3)。

2.2 BALF细胞计数及分类

哮喘组、哮喘 +烟雾暴露组 BALF中白细胞总数、嗜酸粒细胞、中性粒细胞、淋巴细胞较对照组、烟雾暴露组增加,差异有统计学意义(均 P <0.05);哮喘+烟雾暴露组BALF中白细胞总数和中性粒细胞较哮喘组增加,嗜酸粒细胞较哮喘组减少,差异有统计学意义(均P <0.05),见表1。

2.3 各组大鼠肺组织CCR6基因表达的检测结果

利用相应软件分别获得各组样本与内参 βactin相对应的扩增曲线(图5~6见彩插3)以对照组为定标,分别计算得对照组、烟雾暴露组、哮喘组和哮喘+烟雾暴露组的Ct值、△Ct值和△△Ct值,最后算出 2-ΔΔCt值(表 1)。统计学分析哮喘组、哮喘+烟雾暴露组的CCR6mRNA水平均高于对照组、烟雾暴露组,差异有统计学意义(P均 <0.01);哮喘+烟雾暴露组的转录水平高于哮喘组,差异有统计学意义(P<0.01)。

表1各组大鼠BALF中白细胞总数及分类计数(ˉ±s,n=10)Tab.1 Count and classification of white blood cells in the rat BALF

表1各组大鼠BALF中白细胞总数及分类计数(ˉ±s,n=10)Tab.1 Count and classification of white blood cells in the rat BALF

注:与对照组比较,aP <0.01,bP <0.01;与哮喘组比较,cP <0.01.Note:aP <0.01,bP <0.01,compared with the control group;cP <0.01,compared with the OVA exposure group.

组别Groups 白细胞总数WBC(×107/L)嗜酸粒细胞EOS(%)中性粒细胞NEU(%)淋巴细胞LYM(%)巨噬细胞AM(%)对照组Control group 10.1±3.8 1.3±0.7 2.2±1.1 6.3±1 value <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01.8 89.6±2.7烟雾暴露组 Smoke exposure group 47.7±6.8a 0.5±0.3 2.7±1.4 6.6±2.0 90.5±5.4哮喘组OVA exposure group 69.0±3.5b 4.1±1.0a 8.9±2.0a 21.4±3.7a 65.6±3.8a哮喘+暴露组OVA combined smoke 86.7±5.2bc 2.2±1.0ac 19.0±2.8ac 23.8±3.8a 55.2±2.9ac F value 349.1 29.7 129.1 78.4 166.8 P

2.4 各组大鼠气道CCR6蛋白的表达结果

CCR6主要表达于支气管上皮细胞的胞膜和胞浆中,阳性反应产物呈棕黄色。正常对照组,CCR6不表达或仅有弱阳性表达;哮喘组和哮喘+烟雾暴露组的CCR6蛋白表达均明显高于对照组、烟雾暴露组,差异有统计学意义(P均 <0.01);哮喘 +烟雾暴露组高于哮喘组,差异有统计学意义(P<0.01)(图7~10见彩插4)。各组大鼠气道 CCR6蛋白表达结果的比较见表2。

表2 各组大鼠气道CCR6 mRNA及蛋白(A值)水平的比较(±s,n=10)Tab.2 Comparison of CCR6 mRNA and protein levels in the rat airways

表2 各组大鼠气道CCR6 mRNA及蛋白(A值)水平的比较(±s,n=10)Tab.2 Comparison of CCR6 mRNA and protein levels in the rat airways

注:与对照组比较,aP <0.01,bP <0.001;与哮喘组比较,cP <0.01.Note:aP <0.01,bP <0.001,compared with the control group;cP <0.01,compared with the OVA exposure group.

CCR6 A value对照组组别Groups CCR6 mRNA(2 -ΔΔCtvalue)value <0.01 <0.01 Control group 1.01±0.52 0.299±0.027烟雾暴露组Smoke exposure group 5.55±0.54a 0.442±0.018a哮喘组 OVA exposure group 8.15±0.88b 0.452±0.013b哮喘+暴露组OVA+smoke 15.16±0.87bc 0.531±0.024bc F value 538.15 163.63 P

3 讨论

研究表明烟草烟雾能增加OVA致敏豚鼠气道急性变应性炎症反应[6],吸烟哮喘气道炎症的特点是Th2细胞反应加强[7]、气道壁以中性粒细胞浸润为主[8],肿瘤坏死因子(tumor necrosis factor,TNF)а等炎性细胞因子水平增加[9],但其机制尚不完全清楚。本实验,烟雾暴露组采用小量吸烟,BALF中性粒细胞数较对照组明显增加,但所占细胞比例无明显变化,表明小量吸烟对BALF细胞分类影响不大。但哮喘大鼠烟雾暴露后BALF白细胞总数及中性粒细胞比例明显增加,嗜酸粒细胞减少,气道周围炎性细胞浸润更加明显,进一步证实烟雾暴露可以加重和改变哮喘气道原有的炎症反应。

趋化因子(chemokine)是一类结构相似、分子量8~10 kD、具有趋化功能的细胞因子的总称。趋化因子通过趋化多种炎症细胞如淋巴细胞、单核细胞、中性粒细胞、树突状细胞等,在多种疾病的免疫反应及炎症损伤中发挥着重要作用。近年来,趋化因子在哮喘气道炎症中的作用受到了广泛关注。

趋化因子CCL20是β趋化因子家族的新成员,又称巨噬细胞炎性蛋白-3α(MIP-3α),CCR6是CCL20唯一的受体。Lukacs NW 等[1]用 CCR6基因敲除哮喘模型小鼠(CCR6-/-)与野生型小鼠对比研究发现,CCR6-/-小鼠支气管嗜酸粒细胞聚集数量较野生型小鼠降低了10倍,IL-5水平降低了5~8倍,气道阻力降低了2~3倍,同时血浆中IgE水平亦显著降低。同样,由 Leborgne等[10]作者也发现:由CD8+T淋巴细胞启动招募树突状细胞到上皮组织依赖于CCR6/MIP-3α途径。以上研究表明,气道上皮CCR6表达水平在哮喘的气道慢性炎症中起着非常重要的作用。而Bracke KR等[2]研究中发现,烟雾暴露的CCR6-/-小鼠肺组织MIP-3α mRNA及其蛋白表达水平较对照组显著降低;肺泡灌洗液中树突状细胞、T淋巴细胞、中性粒细胞数量较对照组显著减少;TNF-a基因表达水平较对照组也显著降低。该研究表明,CCR6表达水平对于烟草烟雾暴露导致的肺部炎症也具有重要作用。

研究发现过敏性炎症时气道上皮细胞可分泌大量 CCL20[11],而 CCR6是 CCL20 唯一的受体,本实验研究了烟雾暴露对哮喘大鼠气道上皮CCR6表达的影响,结果发现,哮喘+烟雾暴露组大鼠气道上皮CCR6 mRNA及其蛋白表达水平较对照组、烟雾暴露组和哮喘组均显著增高,BALF及气道周围炎症细胞明显增加,表明烟草烟雾暴露可通过增加哮喘大鼠气道粘膜CCR6表达水平,促进气道慢性炎症反应。研究表明CCL20表达水平能够被TNF-a等许多前炎性细胞因子和空气微粒上调[12],吸烟能够使 TNF-a 等炎性细胞因子水平增加[2,9],结合本实验结果,我们推测烟草烟雾暴露可直接或通过TNF-a等炎症因子的释放间接作用于气道上皮细胞,使其产生大量CCL20,后者与其受体CCR6相互作用,选择性地招募树突状细胞、T淋巴细胞及中性粒细胞并使其活化,从而产生大量炎症介质、细胞因子、氧自由基和蛋白酶等,进一步加重了哮喘大鼠气道炎症反应。

总之,哮喘气道慢性炎症是多种因素综合作用的结果,发生机理非常复杂,烟草烟雾暴露可以加重和改变哮喘气道原有的炎症反应,CCR6在其发生发展过程中有一定作用,但其具体机制尚未完全明了,有待进一步研究。

[1] Lukacs NW,Prosser DM,Wiekowski M,et al.Requirement for the chemokine receptor CCR6 in allergic pulmonary inflammation[J].J Exp Med,2001,194(4):551-555.

[2] Bracke KR,D'hulst AI,Maes T,et al.Cigarette smoke-induced pulmonary inflammation and emphysema are attenuated in CCR6 deficient mice[J].J Immunol,2006,177(7):4350 - 4359.

[3] 沈华浩,王苹莉.支气管哮喘小鼠模型应用评价[J].中华结核和呼吸杂志,2005,28:284-286.

[4] 许三林,吴人亮,陈春莲,等.上皮钙粘附素在吸烟小鼠呼吸道上皮损伤修复中表达的研究[J].中华结核和呼吸杂志,1999,22:417-419.

[5] Kenneth J,Livak TD.Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCtmethod [J].Method,2001,25(9):402-408.

[6] Van Hove CL,Moedoose K,Maes T,et al.Cigarette smoke enhances Th-2 driven airway inflammation and delays inhalational tolerance[J].Respir Res,2008,9:42.

[7] Nouri-Shirazi M,Guinet E.A possible mechanism linking cigarette smoke to higher incidence of respiratory infection and asthma[J].Immunol Lett,2006,103(2):167 -176.

[8] Chalmers GW,Macleod KJ,Thomson L,et al.Smoking and airway inflammation in patients with mild asthma [J].Chest,2001,120(6):1917 -1922.

[9] Tamimi A,Serdarevic D,Hanania NA.The effects of cigarette smoke on airway inflammation in asthma and COPD:therapeutic implications[J].Respir Med,2012,106(3):319 -328.

[10] Le Borgne MN,Etchart A,Goubier SA,et al.Dendritic cells rapidly recruited into epithelial tissues via CCR6/CCL20 are responsible for CD8+T cell crosspriming in vivo[J].Immunity,2006,24:191-201.

[11] Ghadjar P,Rubie C,Aebersold DM,et al.The chemokine CCL20 and its receptor CCR6 in human malignancy with focus on colorectal cancer[J].Int J Cancer,2009,125(4):741 -745.

[12] Reibman J,Hsu Y,Chen LC,et al.Airway epithelial cells release MIP-3α/CCL20 in response to cytokines and ambient particulate matter[J].Am J Respir Cell Mol Biol,2003,28(6):648-654.

猜你喜欢
烟雾粒细胞气道
假性粒细胞减少是怎么回事
儿童嗜酸性粒细胞增多相关疾病研究
薄如蝉翼轻若烟雾
重组人粒细胞刺激因子对肿瘤化疗后骨髓抑制作用研究
84例儿童气道异物诊治分析
影视剧“烟雾缭绕”就该取消评优
咸阳锁紧烟雾与尘土
芎归六君子汤减少COPD大鼠气道黏液的高分泌
达托霉素相关急性嗜酸性粒细胞性肺炎
利奈唑胺片剂有效治疗气道支架相关肺部MRSA感染