猪场氨气除臭剂的研究及效果评价

2015-01-03 07:12籍景淑雷明刚张妮娅齐德生
养殖与饲料 2015年3期
关键词:除臭剂脲酶猪粪

刘 婕 籍景淑 雷明刚 张妮娅 齐德生

华中农业大学动物科技学院,武汉 430070

猪场氨气除臭剂的研究及效果评价

刘 婕 籍景淑 雷明刚 张妮娅 齐德生*

华中农业大学动物科技学院,武汉 430070

为了解决养猪生产中氨气污染问题,本试验通过体外试验分别研究了乙酰氧肟酸(Acetohydroxamic acid,AHA)、啤酒酵母、枯草芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌按不同剂量(AHA:0.15%、0.30%和0.60%,微生物:0.05%、0.10%和0.30%)添加到猪粪中对猪粪NH3产生的影响。于24 h、48 h和72 h测定容器中NH3的浓度,猪粪中总氮、铵态氮(NH4+-N)、脲酶活性和亚硝酸盐的含量。结果显示,在猪粪中添加AHA,72 h时NH3浓度显著降低(<0.05);48 h时0.6%AHA可抑制脲酶的活性(<0.05),各组NH4+-N的含量显著升高(<0.05)。啤酒酵母可显著提高猪粪中NH4+-N的含量(<0.05)。地衣芽孢杆菌处理48 h后,显著升高NH3含量(<0.05)。枯草芽孢杆菌对猪粪中的各项指标影响不显著(>0.05)。同时本试验将啤酒酵母、枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌与大肠杆菌和沙门氏菌共同培养,研究这3种微生物对致病菌的生长抑制作用,结果显示,对大肠杆菌抑制率分别为64.07%、15.59%和56.35%,对沙门氏菌的抑制率分别为78.20%、80.60%和12.03%。AHA和啤酒酵母、枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌共培养,结果表明AHA对3种微生物均无抑制作用。基于以上研究结果,将AHA、啤酒酵母、枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌和膨润土按40∶2∶2∶1∶20比例复合,作为饲料添加剂添加到猪日粮中,研究该复合除臭剂对NH3消除的影响。结果显示添加量为0.15%的复合剂能显著降低猪舍内NH3的浓度(<0.01)。结果表明,3种微生物制剂和AHA单独作为除臭剂使用效果并不理想,但是将它们与膨润土按一定比例混合后作为饲料添加剂使用,添加量为0.15%时,能够明显降低猪舍中NH3含量。

乙酰氧肟酸;啤酒酵母;枯草芽孢杆菌;地衣芽孢杆菌;猪粪;NH3

畜禽养殖规模化、集约化发展的同时带来了严重的环境污染,畜牧场粪便的集中排放对周围的空气、水、土壤造成了严重污染。据测定1头猪日排粪尿6 kg,年排泄量为2.5 t[1],根据国家统计局统计,2013年我国生猪存栏量达71 557万头,由此可以推算猪粪尿年总产量约为111 875万t。猪粪中的蛋白质等有机物在微生物的分解作用下产生大量的恶臭气体,其中包括NH3、硫化氢、甲硫醇等,不仅对附近空气造成严重污染,而且高浓度的臭气对家畜的生长也有严重影响,同时对饲养员的健康造成威胁。所以为了解决猪场恶臭污染问题,研究经济有效的除臭剂很有必要。NH3是臭气的主要成分之一,其主要来源之一是经脲酶分解尿素而产生,AHA是一种很有效的脲酶抑制剂,对单胃动物无害[2]。大量研究发现枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌和啤酒酵母可有效抑制大肠杆菌、沙门氏菌等主要产臭气细菌的生长,并可提高饲料转化率,降低动物粪便中氮的含量[3-5]。膨润土的主要成分是蒙脱石,具有独特的双层纹状组合和八面体结构,吸附能力强[6]。另外膨润土还可有效降低仔猪的腹泻率,提高乳酸杆菌/大肠杆菌殖[7]。根据膨润土的特性,选其作为稀释剂,还可以吸附部分NH3等有害气体。本试验将选择AHA、枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌、啤酒酵母和膨润土作为除臭剂使用,通过体外试验探讨这3种微生物和AHA对猪粪产NH3量的影响,为使用微生物制剂直接喷撒猪粪来降低NH3量提供依据。并通过动物试验研究微生物制剂、AHA和膨润土按一定比例混合后,作为饲料添加剂使用,对NH3消除的影响,为其在生产应用中提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 体外试验

1)试验材料。

枯草芽孢杆菌(cfu≥200亿/g)、地衣芽孢杆菌(cfu≥200亿/g)、啤酒酵母(cfu≥150亿/g)由武汉华扬动物药业有限公司提供;AHA(≥10%)由武汉神州化工有限公司提供;新鲜猪粪采于华中农业大学种猪场;大肠杆菌和沙门氏菌由国家药物残留基准实验室提供。

2)试验方法。

①微生物制剂和AHA对猪粪NH3、NH4+-N、脲酶活性、亚硝酸盐含量的影响。分别称量100 g新鲜粪置于12个2 L带橡胶塞锥形瓶中,随机分成4组,每组3个重复,第1组为空白对照组,将啤酒酵母按不同添加量分别与新鲜粪便充分混匀,盖紧橡胶塞,分别在 24 h、48 h和 72 h测定 NH3、NH4+-N、脲酶活性、亚硝酸盐含量各项指标。枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌、AHA对猪粪NH3、NH4+-N、脲酶活性、亚硝酸盐含量影响的试验方法与啤酒酵母的相同(具体添加量见表1)。测定装置如图1所示。

表1 体外试验中各处理组微生物制剂和AHA的添加量情况

图1 体外试验测定装置

②微生物制剂对大肠杆菌和沙门氏菌的抑制作用。处理组为灭菌试管中分别加入0.5 mL大肠杆菌培养液(106~107cfu/mL)和0.5 mL啤酒酵母稀释液(106~107cfu/mL),9 mL灭菌生理盐水,对照组加0.5 mL大肠杆菌培养液,9.5 mL灭菌生理盐水。各组试管倍比稀释,取稀释液0.1 mL涂布于伊红美蓝琼脂培养基,置于37℃恒温培养箱中培养12 h,活菌计数,每组3个重复。枯草芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌对大肠杆菌和沙门氏菌的抑制作用的试验方法与啤酒酵母的方法相同。

③AHA对微生物生长的影响。称取0.1 g饲料级啤酒酵母于10 mL LB培养基中,另取1 g AHA溶于10 mL无菌蒸馏水中,并将AHA和啤酒酵母和按3∶1的比例混合于无菌玻璃管中。对照组不加AHA,用封口膜封口,置于37℃恒温培养箱中培养24 h后,用无菌生理盐水等比例稀释后取0.1 mL涂布于营养琼脂培养基上,置于恒温培养箱中37℃培养24 h,活菌计数。AHA对枯草芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌影响的试验方法与啤酒酵母的方法相同,比例分别为AHA∶枯草芽孢杆菌=30∶1 和AHA∶地衣芽孢杆菌=60∶1。每组设3个重复。

3)测定指标及方法。

①NH3。分别在24 h、48 h、72 h用大气采样器采集瓶内的NH3,方法参照GB/T14668-93。

②总氮。将样品用1∶3 HCl固定,65℃烘干后制成风干样,方法参照GB/T6432-94。

③NH4+-N。取0.2 g左右样品加入2 mL 10% 的HCl,8 mL蒸馏水,浸泡20 min,过滤,取滤液0.5 mL于50 mL的比色管中稀释,用纳氏试剂比色法测定。

④脲酶活性。采用pH增值法测定[8]。

⑤亚硝酸盐。比色法,方法参照标准GB/T13085-2005。

1.2 复合除臭剂对猪舍NH3的影响

根据试验1.1的结果,分别选择AHA、啤酒酵母,枯草芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌的最佳浓度,并进行复合,复合除臭剂的组成为AHA∶啤酒酵母∶枯草芽孢杆菌∶地衣芽孢杆菌∶膨润土=40∶2∶2∶1∶20。

1)试验动物。

选取3个封闭性较好、猪健康状况良好的猪舍,分别编号为Ⅰ、ⅠⅠ、ⅠⅠⅠ,Ⅰ号猪舍有310头猪,体质量在35~40 kg;ⅠⅠ号猪舍有308头,体质量在65~70 kg;ⅠⅠⅠ号猪有302头,体质量在90~100 kg。各组试验采用自身对照。

2)试验设计及饲养管理。

将每栋猪舍内按栏分为4个重复,每个重复头数基本相同,试验时间为10 d。第1~3天饲喂基础日粮,测定每栋猪舍内NH3浓度。从第4天起,将复合除臭剂按不同比例添加到猪日粮中,Ⅰ号和ⅠⅠ号猪舍猪日粮添加复合除臭剂的比例分别为0.15%和0.30%,ⅠⅠⅠ号猪舍猪日粮中添加AHA(≥10%)和0.20%复合除臭剂。第8天开始测定猪舍内NH3的浓度,并连续测定3 d。在整个试验期内,猪自由采食和饮水,每天早晨人工清粪并开窗通风换气,晚上关闭窗户,饲料和饲养管理前后一致,每天记录猪的发病和腹泻等情况。

3)样品采集。

空气。试验期的第1~3天和第8~10天,每天05:00和18:00,采集猪舍NH3。猪舍总长40 m,采样点之间间隔7 m,共设5个采样点,每个点采样设2个平行。NH3的测定方法同3)①。

1.3 统计分析

各组试验数据先用Excel 2007简单统计,采用SAS 8.0软件进行单因素方差分析,用Duncan’s进行多重比较,以<0.05时差异显著,结果用“平均值±标准差”(M±SD)表示。

2 结果与分析

2.1 AHA和微生物制剂体外试验的作用

1)啤酒酵母对猪粪NH3、脲酶活性、总氮、亚硝酸盐和NH4+-N的影响。

由表2可知,以啤酒酵母的不同添加水平处理猪粪,在24 h,0.05%和0.30%添加组NH3含量显著增高(<0.05);但在48 h和72 h时,差异不显著(>0.05)。不同处理组对猪粪的脲酶活性影响不显著(>0.05)。

表2 啤酒酵母对猪粪NH3、脲酶活性的影响

表3 啤酒酵母对猪粪总氮、亚硝酸盐、NH4+-N的影响

由表3可知,在24 h时啤酒酵母添加量为0.1%能显著降低猪粪中总氮的含量(<0.05),在处理48 h时添加量为0.05%和0.30%显著升高猪粪总氮的含量(<0.05)。在处理24 h时0.30%的添加量显著增加了猪粪中亚硝酸盐的含量(<0.05)。在处理24 h时,各处理组猪粪中NH4+-N的含量显著增加(<0.05);48 h时0.10%的添加量显著增加猪粪中NH4+-N的含量(<0.05);72 h时 0.05%和0.30%的添加剂量组增加猪粪中NH4+-N的含量(<0.01)。

由表3可知,在24 h时啤酒酵母添加量为0.10%能显著降低猪粪中总氮的含量(<0.05),在处理48 h时添加量为0.05%和0.30%显著升高猪粪总氮的含量(<0.05)。在处理24 h时0.30%的添加量显著增加了猪粪中亚硝酸盐的含量(<0.05)。在处理24 h时,各处理组猪粪中NH4+-N的含量显著增加(<0.05);48 h时0.10%的添加量显著增加猪粪中NH4+-N的含量(<0.05);72 h时 0.05%和0.30%的添加剂量组增加猪粪中NH4+-N的含量(<0.01)。

2)地衣芽孢杆菌对猪粪NH3、脲酶活性、总氮、NH4+-N和亚硝酸盐的影响。

由表4可知,在猪粪中添加地衣芽孢杆菌,处理48 h 0.3%组NH3的产量显著增加(<0.05)。处理 48 h时 0.3%的添加量显著提高猪粪中NH4+-N的含量(<0.05)。各处理组对猪粪中脲酶活性、亚硝酸盐和总氮含量的影响差异不显著(>0.05)。

表4 地衣芽孢杆菌对猪粪中NH4+-N、NH3和脲酶活性的影响

3)枯草芽孢杆菌对猪粪NH3、脲酶活性、总氮、NH4+-N和亚硝酸盐的影响。

由表5可知,枯草芽孢杆菌处理猪粪,处理组对总氮、NH4+-N、亚硝酸盐和NH3的影响差异不显著(>0.05),有增高的趋势。处理72 h时,0.3%添加剂量组显著增高脲酶活性(<0.05)。

表5 枯草芽孢杆菌对猪粪中NH3和脲酶活性的影响

4)AHA对猪粪NH3、脲酶活性、总氮、NH4+-N的影响。由表6可知,猪粪中添加AHA,处理48 h后,0.3%剂量组NH3的含量显著降低(<0.05),其他剂量组也有下降趋势(>0.05);当处理72 h后,各处理组NH3的产生量均显著降低(<0.05)。处理24 h时0.3%剂量组和处理48 h时0.6%剂量组,脲酶活性显著降低(<0.05);处理72 h时,各组猪粪脲酶活性差异不显著(>0.05),但有下降趋势。24 h时猪粪中NH4+-N的含量显著增加(<0.01);处理48 h时0.6%剂量组,猪粪中的NH4+-N的含量显著增加(<0.05);处理72 h时0.3%添加剂量组NH4+-N的含量显著增加(<0.05)。

表6 AHA对NH3、脲酶活性、NH4+-N的影响

2.2 微生物制剂对猪粪中大肠杆菌和沙门氏菌生长的影响

由图2可知,枯草芽孢杆菌对大肠杆菌的抑制率为56.35%,对沙门氏菌的抑制率为12.03%;地衣芽孢杆菌对大肠杆菌的抑制率为15.59%,而对沙门氏菌的抑制率达到80.6%;啤酒酵母对大肠杆菌的抑制率为64.07%,对沙门氏菌的抑制率为78.2%。

2.3 AHA对微生物制剂生长的影响

由图3可知,AHA对啤酒酵母生长有一定的促进作用,对枯草芽孢杆菌的生长无太大的影响,对地衣芽孢杆菌生长有一定的抑制作用,但影响并不大。由试验结果可知,AHA与微生物制剂混合作为饲料添加剂,对微生物的生长增殖没有太大的影响。

2.4 复合除臭剂对猪舍NH3的影响

0.15%的复合除臭剂对猪舍内NH3浓度的影响差异极显著(<0.01)。0.30%的复合除臭剂和0.20%的AHA对猪舍内NH3浓度的影响差异不显著(>0.05)。见图4。

3 讨 论

3.1 啤酒酵母、地衣芽孢杆菌和枯草芽孢杆菌对猪粪NH3的影响

猪粪中的NH3主要是由脲酶分解尿素产生的,地衣芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌和啤酒酵母在一定条件下可以利用铵态氮,并且抑制主要产臭气微生物的生长。单奇华等[9]研究发现,将筛选出的酵母菌按比例添加到鸡粪中,可降低氨气30%。杜珍辉的研究结果显示地衣芽孢杆菌无氮培养液(3×108cfu/g)按10%接种在无菌猪粪中,NH3的浓度从2.53 g/L降低到0.64 g/L,降低了74.7%[10]。孙瑞锋等将枯草芽孢杆菌以0.10%的比例直接饲喂给鸡,收集鸡粪后密封,测定鸡粪在发酵过程中NH3降低了20.35%[5]。但王晓霞等学者得到不同的结果,将枯草芽孢杆菌接种到新鲜鸡粪中,对NH3的影响差异不显著(>0.05)[11]。

图2 微生物制剂对大肠杆菌和沙门氏菌的影响

图3 AHA对有益微生物的影响

图4 复合除臭剂不同添加剂量对猪舍内NH3含量的影响

本试验中啤酒酵母菌对猪粪中的NH4+-N有显著固定的作用(<0.05),NH4+-N是NH3生成的前体,粪便中NH4+-N的含量高于对照组,NH4+-N被固定可以减少NH3的排放[9]。地衣芽孢杆菌和枯草芽孢杆菌处理猪粪,消除NH3的效果并不明显,地衣芽孢杆菌反而增高了NH3的浓度,这与一些学者的研究结果并不一致,分析可能原因,一是本试验直接处理猪粪后,微生物制剂分解猪粪中的有机成分生成的NH3高于其降解的NH3。二是不同试验中菌种之间的差异、不同的处理方式和外界环境的影响也可能是导致试验结果的差异性,具体原因还有待进一步探讨。

3.2 AHA对猪粪NH3、脲酶活性、总氮、NH4+-N的影响

AHA作为一种脲酶抑制剂已经被广泛应用到反刍动物中。有学者证明AHA是一种非常有效的脲酶抑制剂[12]。尿素经脲酶分解产生NH4+-N,NH4+-N是NH3的前体物质,利用AHA抑制脲酶活性,减少NH4+-N的产生,并且AHA呈弱酸性,有固定NH4+-N的可能。有学者研究发现,AHA使猪粪样中脲酶活性显著降低[3],可降低NH3的排放,降低尿素的分解速度,并且将氨以NH4+-N的形式固定在猪粪中[13]。

本试验发现AHA显著降低NH3的含量并降低了脲酶活性,而猪粪中NH4+-N的含量显著升高。在整个系统中总氮量不变的情况下,猪粪中NH4+-N的含量升高,说明部分已经生成的NH4+-N被固定在猪粪中,而没有分解成NH3,可能是因为AHA呈弱酸性,改变了粪便的pH值,具体原因还有待进一步研究。

3.3 微生物制剂对猪粪中的大肠杆菌和沙门氏菌的抑制作用

粪便中NH3的另一个主要来源是由粪便中的微生物分解有机物质而产生,尤其是粪便中的蛋白质和碳水化合物[14]。主要的产臭气微生物为大肠杆菌、沙门氏菌和变形杆菌[15]。虽然陈生龙[16]和李洁云[17]通过体内试验研究,未发现啤酒酵母可抑制有害微生物的生长,但其具有对致病菌如大肠杆菌和沙门氏菌的抗粘附作用[18],从而达到抑制致病菌在肠道中的定殖,减少发病机率。本研究发现,啤酒酵母对大肠杆菌和沙门氏菌的抑制作用强,并结合前期的猪粪处理试验结果,啤酒酵母可将氨以NH4+-N的形式固定在猪粪中,如果直接喷洒在猪粪上,可控制NH3的产生。地衣芽孢杆菌在生长繁殖中消耗氧气,利于厌氧菌如乳酸菌和双歧杆菌的生长繁殖,而兼性厌氧菌特别是大肠杆菌的生长受到抑制[19-20]。本试验发现地衣芽孢杆菌对大肠杆菌和沙门氏菌的抑制率分别为15.59%和80.60%。

周宏璐等研究发现从猪粪中分离出的1株枯草芽孢杆菌可有效抑制肠杆菌和肠球菌等需氧菌,同时可促进双歧杆菌、乳酸杆菌和拟杆菌生长[4]。但王城等研究证明,枯草芽孢杆菌对禽舍中分离出来的致病性大肠杆菌、沙门氏菌、肠球菌属细菌没有抑制作用[21]。本试验发现枯草芽孢杆菌对猪粪中的大肠杆菌和沙门氏菌抑制率分别为 50.35%和12.03%。结果不一致的原因可能是试验菌株的来源不同。

根据以上分析可见,微生物制剂在体外条件可有效降低猪粪中主要产臭气微生物的生长和繁殖,通过这个结果可以推测微生物制剂作为饲料添加剂使用有消除NH3等有害气体的可能性,这为后续试验提供依据。

3.4 AHA对微生物制剂生长的影响

AHA作为脲酶抑制剂在反刍动物应用时,对瘤胃细菌总数没有影响[21],本试验发现AHA对枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌、啤酒酵母没有抑制作用,这与李大刚等[21]的研究结果相似。

3.5 复合除臭剂和AHA对猪舍NH3的影响

通过前期的体外试验发现,微生物制剂可有效抑制大肠杆菌和沙门氏菌等主要产臭气细菌的生长和繁殖;AHA可有效降低NH3和脲酶活性,降低血液和肠道中氨的含量,促进仔鸡的生长[22],并显著增高蛋鸡血液中总蛋白含量和降低尿素氮,提高十二指肠的绒毛高度[23]。另外膨润土具有较强的吸附性,将这几种物质按一定比例复合后添加到猪日粮,通过改变肠道内微生物区系、抑制脲酶活性并吸附一部分NH3的途径来达到消除猪舍内NH3等有害气体的目的。

廖新俤 等学者将活菌制剂按0.05%的比例添加到动物饲料中,猪舍内NH3的浓度降低56.46%[24]。本试验中0.15%复合除臭剂可降低猪舍中NH3达30.53%(<0.05)。0.30%的复合除臭剂可使NH3降低了10.20%,但是未达到显著水平。AHA虽然在体外试验中对消除NH3有明显的效果,但在体内试验中对消除NH3没无明显效果。

4 结 论

1)在体外试验中,AHA可有效抑制猪粪NH3的产生,并且与枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌、啤酒酵母复合不会影响微生物制剂的活性,但是作为添加剂单独使用对猪舍内NH3降低效果不显著。

2)啤酒酵母、枯草芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌在体外可有效抑制大肠杆菌和沙门氏菌的生长,但直接喷洒在猪粪上,消除NH3的效果不明显。

3)0.15%复合除臭剂可显著降低猪舍内的NH3。

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产蛋鸡的选择与淘汰

在产蛋期,根据鸡的外表特征及产蛋成绩,对鸡群再次选择,不仅可节约饲料,降低饲养成本,提高鸡群整齐度,而且能减少疾病的发生率。

1 产蛋鸡与停产鸡的外形区别

鸡在产蛋期间,因其性腺活动和代谢机能亢进,卵巢、输卵管和消化器官机能都很旺盛,决定了产蛋鸡与停产鸡外形上存在差别。

1)冠与肉髯。产蛋鸡冠、肉髯大而鲜红,丰满,触摸时感觉温暖;停产鸡冠和肉髯小而皱缩,呈淡红或暗红色。

2)肛门。外侧丰满,大而圆,内侧干燥者为停产鸡。

3)腹部容积。腹部是消化和生殖器官的所在地。产蛋鸡消化和生殖器官发达,体积较大,表现在腹部容积大;而停产鸡则相反,腹部容积较小,鉴别产蛋鸡和停产鸡可测量趾骨间差距。一般来说,停产鸡(包括未产蛋鸡)趾骨间距离仅可放下1指,而产蛋鸡可放下3指以上。

4)色素变换。观察色素的变化,母鸡开始产蛋后,因黄色素转移到蛋黄里,在母鸡肛门、喙、眼睑、耳叶、胫部、脚趾等的黄色缺乏补充,逐渐变成褐色至淡黄色或白色,一般来说,到秋季,产蛋鸡的上述部位的表皮层黄色素已褪完,而停产鸡的这些部位仍呈黄色。

2 高产鸡与低产鸡的外形区别

高产鸡与低产鸡之间的外形特征有较明显的区别。

1)外貌体型。高产鸡身体健康,结构匀称,发育正常,活泼好动,觅食性强;头部秀,无脂肪堆积,额骨宽,头顶几乎呈方形;喙短、宽面弯曲;眼大、圆而有神;胸宽而深,向前突出,体躯长;而胫长短适中,瘠瘦,呈三棱形。低产鸡则与之相反,身体虽健康,但不是过肥就是过瘦,性情呆板,觅食性差,头粗大或过小,头顶狭窄,呈长方形,喙长而直,眼呈椭圆形,眼神迟钝;胸部狭窄而浅,体躯窄而短。

2)换羽。高产鸡换羽迟,一般在秋末或冬初进行,并且换羽迅速,停产时间短;有些特别高产的鸡,甚至整个冬季都不换羽,或只换一批羽毛,停产很短时间,到来年春天气温回升,光照增加,营养丰富时,边产蛋边换羽。低产鸡则不同,往往在夏末秋初换羽,持续时间也相当长。

来源:安徽日报农村版

2015-01-06

国家生猪产业技术体系(CARS-36);中央高校基本科研业务费专项资金(2014PY038)

*通讯作者

刘婕,女,1989年生,博士生,研究方向:霉菌毒素及畜牧养殖环境污染防治。

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