诱导HO-1表达对慢性间歇性缺氧下INS-1细胞凋亡的影响

2017-06-19 19:22徐健李小莉李一禄陈济明
临床肺科杂志 2017年7期
关键词:细胞培养胰岛引物

徐健 李小莉 李一禄 陈济明

诱导HO-1表达对慢性间歇性缺氧下INS-1细胞凋亡的影响

徐健 李小莉 李一禄 陈济明

目的 了解诱导HO-1表达对慢性间歇性缺氧下INS-1细胞凋亡的影响。方法 通过不同浓度CoPP作用于慢性间歇性缺氧下INS-1细胞,观察胰岛素水平、HO-1及Caspase-3水平,采用RT-PCR检测HO-1、Caspase-3mRNA表达。结果 随着CoPP浓度增高,胰岛素、HO-1表达逐渐增高,而Caspase-3逐渐降低,而CoPP浓度达到40umol/L时作用最强(P<0.05)。结论 慢性间歇性缺氧下诱导INS-1细胞HO-1表达,抑制凋亡相关蛋白Caspase-3,在一定程度上对细胞起保护作用。

慢性间歇性缺氧;INS-1;HO-1;凋亡;Caspase-3

阻塞性睡眠呼吸暂停低通气综合征(OSAHS)以睡眠中反复发作的呼吸暂停或上气道梗阻为特征,常常与打鼾、睡眠中断、白天嗜睡和血氧饱和度降低相关[1]。研究证实,OSAHS引起的睡眠结构紊乱和间歇性低氧,能诱发氧化应激、炎症反应,激活交感神经系统,损伤血管内皮功能[2-7]。研究还发现,OSAHS是独立于肥胖的代谢综合征的危险因素[8]。OSAHS与糖尿病之间关系越来越受到重视,但具体机制尚不完全清楚。已有研究发现,胰岛细胞凋亡在糖尿病发生发展是重要机制之一。HO-1系统是机体重要的内源性保护系统,主要通过抗炎,抗氧化、抗凋亡等机制起作用[9-11]。我们探讨在间歇性缺氧条件下通过CoPP诱导INS-1胰岛细胞HO-1表达,对INS-1胰岛细胞凋亡的影响。

资料与方法

一、实验材料

胰岛β细胞株INS-1(上海拜力生物科技有限公司);牛血清白蛋白(Sigma);细胞培养试剂、胎牛血清、RPMI 1640培养基(均为Gibco)。CoPP(Sigma)。

二、方法

1 细胞培养:胰岛INS-1 细胞株购买后,用含10%新生牛血清,2mmol/LL-谷氨酰胺,1mmol/L 丙酮酸钠,50mmoL/L -巯基乙醇,1×105IU/L 青霉素和100mg/L 链霉素的RPMI1640培养基,在37℃,5% CO2及饱和湿度的恒温箱中培养,每2-3d 传代一次。

2 研究对象共分为六组: 将密度为1×105/mL的INS-1 细胞悬液接种至96 孔培养板,每组6个复孔,培养箱中培养24h 后,置于自制密闭仓中,暴露时以缺氧(1.5% O2)气流洗脱细胞培养中气体,继而维持缺氧状态时间(即IH 时段),再以正常氧(21% O2)气体洗脱缺氧气体,而后再维持正常氧时间,周而复始形成循环。IH 暴露时间为12h,次数均为15次/h。细胞暴露的同时,分别加入不同浓度的CoPP(0、10、20、40、60、80)umol/L,12h后收集细胞及上清液进行相应检测。

3 细胞胰岛素分泌检测: 将细胞按5*104个/孔培养于24孔板, 暴露结束后,收集细胞上清液, 采用放射免疫分析法(试剂盒购于北京科美生物技术有限公司)测定胰岛素水平。

4 RT-PCR检测HO-1和Caspase-3 mRNA表达:采用TRIzol抽提细胞总RNA,按照标准抽提步骤进行RNA抽提;取样品1ug,逆转录为cDNA,采用PCR设计和评估软件Primer 3.0设计实时PCR引物。引物序列:HO-1上游引物:ACAGAAGAGGCTAAGACCG;下游引物:CAGGCATCTCCTTCCATT。Caspase-3上游引物:CATGGAAGCGAATCAATGGACT;下游引物:CTGTACCAGACCGAGATGTCA。取样本总cDNA2μl、上下游引物各1mL,按照试剂盒说明书配制相应反应参数的反应体系。PCR扩增条件:94℃预变性2min;95℃变性1min,60℃退火20s,72℃延伸30s,共45个循环。运用数据分析软件进行分析,采用2-△△Ct法计算,得到相对值。

三、统计分析

结 果

一、诱导HO-1表达对INS-1胰岛素分泌影响

研究发现随着CoPP浓度增加,胰岛素水平逐渐升高,当CoPP达到40umol/L时,INS-1细胞胰岛素水平最高(P<0.05),以后随着浓度增加胰岛素水平逐渐下降。(见图1)。

图1 不同浓度CoPP对INS-1胰岛素分泌影响

二、诱导HO-1表达对INS-1细胞HO-1mRNA的影响

研究发现随着CoPP浓度增加,HO-1表达明显升高,呈剂量依耐性,CoPP达到40umol/L时,HO-1表达达到顶峰(P<0.05)。而后随着HO-1浓度增加,HO-1 mRNA表达未见继续增高。(见图2)。

图2 不同浓度CoPP对INS-1细胞HO-1mRNA表达的影响

三、诱导HO-1表达对INS-1细胞Caspase-3 mRNA的影响

研究发现随着CoPP浓度增加,Caspase-3 mRNA表达明显降低。当CoPP达到40umol/L时,能最大程度抑制Caspase-3 mRNA表达(P<0.05)。(见图3)。

图3 不同浓度CoPP对INS-1细胞Caspase-3 mRNA表达的影响

讨 论

近年来,随着研究深入发现OSAHS作为一种常见病,影响全身多个系统,目前认为是一种源头性疾病,导致严重后果。研究发现,OSAHS与糖尿病、冠心病、高血压、心律失常以及缺血性脑血管疾病存在内在联系[12-14]。多项研究表明,OSAHS与糖尿病存在明显相关性。同时,随着中国版OSAHS与糖尿病专家共识的发布,大家越来越关注此两种疾病。

慢性间歇性缺氧是OSAHS主要的致病机制之一,而胰岛素分泌不足和胰岛细胞凋亡增加也是糖尿病重要的发病机制。研究发现,慢性间歇性缺氧可引起胰岛素抵抗,加重大鼠胰岛细胞凋亡[15],因此,凋亡可能是OSAHS与糖尿病内在关联纽带。同时,我们前期研究已证实,慢性间歇性缺氧能明显抑制INS-1胰岛素水平和诱导凋亡。

HO-1是血红素降解途径限速酶,具有抗炎、抗凋亡、抗增殖等多种生物学效应。现有的证据显示,诱导胰岛HO-1表达,能对抗细胞因子介导的有害影响。钴原卟啉(CoPP),作为HO-1的底物,能增加HO-1的表达和活性。而有关HO-1与凋亡的研究中发现,HO-1可通过抑制Caspase-3表达起到抗凋亡作用[16]。Caspase-3是含半胱氨酸的天冬氨酸特异水解酶,在细胞凋亡早期及凋亡过程中起重要作用,是细胞凋亡的关键酶。在正常情况下以无活性的酶原形式存在于多种细胞胞质中,多种刺激因素可激活Caspase-3,活化的Caspase-3又进一步切割不同的底物,引起蛋白级联切割放大,最终使细胞凋亡[17]。

以往的研究表明,CoPP具有细胞保护作用,主要通过上调HO-1抑制凋亡相关蛋白capase-3表达[18]。Lundvig等人研究也发现,诱导HO-1表达能抑制高剂量姜黄素诱导的角质细胞凋亡[19]。本研究从体外细胞培养发现,CoPP能促进间歇性缺氧情况下INS-1细胞胰岛素分泌,抑制凋亡相关蛋白caspase-3表达,对细胞起到保护作用,且随浓度增加,在一定范围内作用越明显,当CoPP达到40umol/L时,其作用最明显。过度诱导HO-1表达则会因诱导剂的过量而产生毒性作用,使HO-1的表达减少,损害脏器功能[20]。因此,诱导HO-1表达通过抑制Caspase-1减轻INS-1凋亡。

综上所述,CoPP对间歇性缺氧影响下INS-1保护作用可能与诱导HO-1表达,抑制凋亡有关。

[1] Thorpy MJ.Classification of sleep disorders[J].Neurotherapeutics,2012,9(4):687-701.

[2] Zhang SX,Wang Y,Gozal D.Pathological consequences of intermittent hypoxia in the central nervous system[J]. Compr Physiol,2012,2(3):1767-1777.

[3] Almendros I,Wang Y,Gozal D.The polymorphic and contradictory aspects of intermittent hypoxia[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2014,307(2):L129-L140.

[4] Gileles-Hillel A,Almendros I,Khalyfa A,et al.Early intermittent hypoxia induces proatherogenic changes in aortic wall macrophages in a murine model of obstructive sleep apnea[J].Am J Respir Crit Care Med,2014,190(8):958-961.

[5] Nair D,Zhang SX,Ramesh V,et al.Sleep fragmentation induces cognitive deficits via nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase-dependent pathways in mouse[J].Am J Respir Crit Care Med,2011,184(11):1305-1312.

[6] Carreras A,Zhang SX,Peris E,et al.Chronic sleep fragmentation induces endothelial dysfunction and structural vascular changes in mice[J].Sleep,2014,37(11):1817-1824.

[7] Zhang SX,Khalyfa A,Wang Y,et al.Sleep fragmentation promotes NADPH oxidase 2-mediated adipose tissue inflammation leading to insulin resistance in mice[J].Int J Obes(Lond),2014,38(4):619-624.

[8] Qian Y,Xu H,Wang Y,et al.Obstructive sleep apnea predicts risk of metabolic syndrome independently of obesity: a meta-analysis[J].Arch Med Sci,2016,12(5):1077-1087.

[9] Wang P,Qiao Q,Li J,et al.Inhibitory effects of geraniin on LPS-induced inflammation via regulating NF-kappaB and Nrf2 pathways in RAW 264.7 cells[J].Chem Biol Interact,2016,253:134-142.

[10] Dai C,Li B,Zhou Y,et al.Curcumin attenuates quinocetone induced apoptosis and inflammation via the opposite modulation of Nrf2/HO-1 and NF-kB pathway in human hepatocyte L02 cells[J].Food Chem Toxicol,2016,95:52-63.

[11] Xie L,Gu Y,Wen M,et al.Hydrogen Sulfide Induces Keap1 S-sulfhydration and Suppresses Diabetes-Accelerated Atherosclerosis via Nrf2 Activation[J].Diabetes,2016,65(10):3171-3184.

[12] Westlake K,Plihalova A,Pretl M,et al.Screening for obstructive sleep apnea syndrome in patients with type 2 diabetes mellitus: a prospective study on sensitivity of Berlin and STOP-Bang questionnaires[J].Sleep Med,2016,26:71-76.

[13] Otero L,Hidalgo P,González R,et al.Association of Cardiovascular Disease and Sleep Apnea at Different Altitudes[J].High Alt Med Biol,2016,17(4):336-341.

[14] Wang L,Cai A,Zhang J,et al.Association of obstructive sleep apnea plus hypertension and prevalent cardiovascular diseases: A cross-sectional study[J].Medicine (Baltimore),2016,95(39):e4691.

[15] Fang Y,Zhang Q,Tan J,et al.Intermittent hypoxia-induced rat pancreatic beta-cell apoptosis and protective effects of antioxidant intervention[J].Nutr Diabetes,2014,4:e131.

[16] Li C,Zhang C,Wang T,et al.Heme oxygenase 1 induction protects myocardiac cells against hypoxia/reoxygenation-induced apoptosis : The role of JNK/c-Jun/Caspase-3 inhibition and Akt signaling enhancement[J]. Herz,2016,41(8):715-724.

[17] Sun J,Xie C,Liu W,et al.The effects of simvastatin on hippocampal caspase-3 and Bcl-2 expression following kainate-induced seizures in rats[J].Int J Mol Med,2012,30(4):739-746.

[18] Ma T,Chen T,Li P,et al. Heme oxygenase-1 (HO-1) protects human lens epithelial cells (SRA01/04) against hydrogen peroxide (H2O2)-induced oxidative stress and apoptosis[J].Exp Eye Res,2016,146:318-329.

[19] Lundvig DM,Pennings SW,Brouwer K M,et al.Cytoprotective responses in HaCaT keratinocytes exposed to high doses of curcumin[J].Exp Cell Res,2015,336(2):298-307.

[20] 刘明,赵晓宇,王波,等.钴-原卟啉诱导大鼠血红素加氧酶-1适度过表达的研究[J].医学分子生物学杂志,2005,2(2):79-82.

Effect of induced HO-1 expression on INS-1 cells in chronic intermittent hypoxia

XUJian,LIXiao-li,LIYi-lu,CHENJi-ming
DepartmentofRespiratoryMedicine,ShenzhenNanshanDistrictPeople’sHospital,Shenzhen518052,China

Objective To understand the effect of HO-1 expression on the apoptosis of INS-1 cells induced by chronic intermittent hypoxia. Methods INS-1 cells were observed under different concentrations of CoPP in chronic intermittent hypoxia, and the levels of insulin were observed. It used RT-PCR to detect the expression of HO-1 and Caspase-3 mRNA. Results With the increase of CoPP concentration, the expression of insulin and HO-1 mRNA gradually increased, while Caspase-3 mRNA decreased. When the concentration of CoPP reached 40umol/L, the strongest effect was observed. Conclusion The induced expression of HO-1 in INS-1 cells can inhibit protein Caspase-3, and protected the cells at certain extent.

chronic intermittent hypoxia; INS-1; HO-1; apoptosis; Caspase-3

10.3969/j.issn.1009-6663.2017.07.023

广东省科技计划项目(No 2013B021800048)

518000 广东 深圳,深圳市南山区人民医院呼吸内科

2016-11-10]

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