北京市昌平地区园林植物烟草花叶病毒的检测

2022-03-10 03:38刘羽丰徐晨曦杨爱珍任俊达尚巧霞
北京农学院学报 2022年1期
关键词:花叶病毒园林植物海棠

刘羽丰,徐晨曦,吴 泽,杨爱珍,任俊达*,尚巧霞*

(1.北京农学院生物与资源环境学院/农业农村部华北都市农业重点实验室,北京 102206;2.北京市海淀区圆明园管理处,北京 100084)

烟草花叶病毒(tobacco mosaic virus,TMV)属帚状病毒科(Vigaviridae)烟草花叶病毒属(Tobamovirus),病毒粒子为杆状,大小为18 nm×300 nm。TMV病毒粒子异常稳定,其侵染性能保持数十年,可以通过机械接种传播[1]。该病毒寄主范围较广泛,在茄科植物中较常见,最容易为害烟草和番茄,此外,还能侵染400 余种植物,引起重要病害[2]。TMV的核酸为+ssRNA,全长6 395 nt左右,编码4种蛋白:126 kDa和183 kDa复制酶蛋白、30 kDa细胞间运动蛋白(MP)和17.5 kDa外壳蛋白(CP)[3-4]。其中,TMV的126 kDa蛋白可以抑制寄主植物的转录后基因沉默(PTGS)[5];TMV外壳蛋白与症状的诱导和病毒粒子的长距离移动有关[6]。研究表明,TMV有很多株系,没有统一的划分标准,各划分间也存在地理隔离[7]。例如世界上的TMV可分为4个类群,而中国的TMV株系则有很多[1,8]。防治TMV所致植物病害主要依靠抗病品种和无毒健苗。

近年来,血清学和RT-PCR方法被广泛应用于TMV的检测[9-10]。中国对园林植物在滞尘能力、重金属含量和缓解城市“热岛效应”等方面研究较多[11-13],对TMV在园林植物中的发生情况等研究较少。该研究用间接酶联免疫吸附测定方法(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)、RT-PCR方法和序列测定分析技术检测北京市昌平地区园林植物,明确北京园林植物TMV的发生情况,为园林植物病毒病的相关研究提供参考。

1 材料与方法

1.1 植物材料

2020年12月9日从北京市昌平地区北京农学院(116°32′E,40°10′N)的园林植物中采集有类似病毒症状的不同种类叶片共8种植物样品,分别为大叶黄杨(Buxussp.)、早熟禾(Poasp.)、棣棠花(Kerriasp.)、鸢尾(Irissp.)、月季(Rosasp.)、桃树(Amygdalussp.)、海棠(Malussp.)和女贞(Ligustrumsp.)。大叶黄杨和海棠的叶片症状是坏死斑,早熟禾、棣棠花和鸢尾的叶片症状是花叶,月季、桃树和女贞的叶片症状是斑驳。

1.2 主要试剂

烟草花叶病毒抗血清由中国农业大学惠赠;酶标羊抗兔IgG购自北京博奥森生物技术有限公司;EASYspin植物RNA快速提取试剂盒、PCR Mix、琼脂糖凝胶纯化回收试剂盒购自北京艾德莱生物科技有限公司;dNTPs、5×M-MLV逆转录反应缓冲液、M-MLV反转录酶、RRI抑制剂购自Takara 公司。

1.3 间接ELISA检测

设有4种样品:植物样品为采集的北京市昌平地区8种园林植物有类似病毒症状的叶片、空白样品为包被缓冲液样品(NaHCO32.93 g,Na2CO31.59 g,加蒸馏水至1 000 mL)、阴性对照为已知的无病毒健康烟草样品、阳性对照为已知的带烟草花叶病毒的烟草样品,每种样品重复 3 次。

称取待测植物样品放入装有钢珠的2 mL离心管,经液氮充分研磨后,加20倍体积的包被缓冲液,4 ℃ 下11 000 r/min 5 min。在酶联板上加入上清液,37 ℃培养2~3 h。清除酶联板上的溶液,用装有洗涤缓冲液的洗涤瓶冲洗3次,每次静置3 min,清除酶联板的水分。加入稀释 4 000 倍的TMV抗血清,37 ℃培养 2~3 h;洗涤3次。加入稀释5 000倍的酶标羊抗兔IgG缓冲液,37 ℃培养2~3 h;洗涤3次。配置底物溶液,加入酶联板中,室温培养1 h显色。根据颜色深浅,记录结果。

1.4 RT-PCR检测

1.4.1 植物总RNA提取 使用EASYspin植物RNA快速提取试剂盒,称取100 mg植物样品于2 mL离心管中,加钢珠放入液氮中,充分冷却后用混合研磨仪进行震荡研磨,重复2次至细粉状。加500 μL裂解液和50 μL植物RNA助提剂于离心管中,快速振荡;56 ℃水浴3 min,13 000 r/min 10 min。取400 μL上清与200 μL无水乙醇混合,13 000 r/min 2 min,弃废液。加700 μL去蛋白液,室温静置1 min,13 000 r/min 30 s,弃废液。加500 μL漂洗液,13 000 r/min 30 s,弃废液;重复 1 遍;取吸附柱置于空收集管中,13 000 r/min 2 min。取吸附柱放入1.5 mL离心管中,加35 μL无酶水,室温静置2 min,12 000 r/min 1 min,获得总RNA。

1.4.2 反转录反应 以1.5 μL提取的总RNA为模板,加入随机上游引物和下游引物各 0.5 μL、dNTP 2 μL,用DEPC水将体系补至 15.5 μL。65 ℃水浴 5 min,冰浴 5 min。加5×M-MLV 逆转录反应缓冲液 4 μL、M-MLV反转录酶和 RRI 抑制剂各0.5 μL。42 ℃ 1 h,70 ℃ 15 min。合成的cDNA 于-20 ℃保存。

1.4.3 PCR扩增、克隆与测序 参照孙晓辉等[14]设计的检测引物TMV F和TMV R。TMV F序列为 5′-GCCGACCCAATAGAGTTA-3′,TMV R序列为5′-GAGGTCCAAACTAAACCAGAAG-3′。

以2 μL cDNA为模板,加入上游引物和下游引物,进行PCR扩增。PCR反应条件为 94 ℃预变性2 min;94 ℃变性30 s,退火50 ℃ 40 s,72 ℃延伸60 s,35个循环;最后72 ℃延伸5 min。PCR产物经1%琼脂糖凝胶电泳验证,目的片段长度为410 bp。

1.5 序列测定与分析

使用琼脂糖凝胶纯化回收试剂盒回收RT-PCR扩增产物,连接到pBM-23克隆载体,送交北京博迈德基因公司进行序列测定。测序结果与NCBI已报道的序列进行比对,使用MEGA 7.0软件的最大似然法(Maximum Likelihood)构建系统进化发育树。

2 结果与分析

2.1 间接ELISA检测结果

北京市昌平地区8种园林植物样品的间接ELISA检测结果显示,桃树(Amygdalussp.)和海棠(Malussp.)样品含有TMV,大叶黄杨(Buxussp.)、早熟禾(Poasp.)、棣棠花(Kerriasp.)、鸢尾(Irissp.)、月季(Rosasp.)和女贞(Ligustrumsp.)样品不含TMV。

2.2 RT-PCR结果

使用引物TMV F/R对采集的8种园林植物样品进行PCR检测,在桃树(Amygdalussp.)和海棠(Malussp.)样品中扩增到410 bp的片段,为部分外壳蛋白基因,与预期大小相符(图1)。

注:M是DNA Marker AL2000+;1—8 是大叶黄杨、早熟禾、棣棠花、鸢尾、月季、桃树、海棠和女贞;9是阳性对照;10是阴性对照。Note: M is DNA Marker AL2000+; 1-8 is Buxus sp., Poa sp., Kerria sp., Iris sp., Rosa sp., Amygdalus sp., Malus sp. and Ligustrum sp.; 9 is positive control; 10 is negative control.图1 北京市昌平地区园林植物TMV的RT-PCR检测结果Fig.1 RT-PCR results of TMV in garden plants in Changping district, Beijing

2.3 TMV分离物的序列分析

将含有目的片段的扩增产物进行序列测定,获得中国烟草花叶病毒桃树分离物TMV-Bjts和中国烟草花叶病毒海棠分离物TMV-Bjht。获得的2个TMV分离物的核苷酸序列同源性为98.54%。使用NCBI进行核苷酸序列比对分析,中国烟草花叶病毒桃树分离物TMV-Bjts与中国烟草花叶病毒丁香分离物TMV-S[15](GenBank登录号:AY566702.1)的同源性为99.51%,中国烟草花叶病毒海棠分离物 TMV-Bjht与中国烟草花叶病毒丁香分离物TMV-S (GenBank登录号:AY566702.1)的同源性为99.02%。

分析引用的TMV分离物序列号和来源见表1,基于外壳蛋白基因核苷酸序列的TMV分离株的系统发育树见图2。选取TMV模式种序列、中国地区来自不同寄主的16条TMV分离物序列和该研究获得的2个TMV分离物序列,并以蕃茄花叶病毒(tomato mosaic virus,ToMV)(GenBank 登录号:AF332868.1)作为组外病毒对照,用Maximum Likelihood法构建系统发育树。中国烟草花叶病毒桃树分离物TMV-Bjts和中国烟草花叶病毒海棠分离物TMV-Bjht都与中国烟草花叶病毒丁香分离物TMV-S亲缘关系较近,归属于组2。

表1 分析引用的TMV分离物序列号和来源

图2 基于外壳蛋白基因核苷酸序列的TMV分离株的系统发育树Fig.2 Phylogenetic tree of TMV isolates based on the nucleotide sequence of coat protein gene

3 讨 论

烟草花叶病毒危害严重,侵染植物后叶片呈花叶和坏死斑,并且能与其他病毒复合侵染进一步加重植株的症状[16-17]。同时,TMV也能侵染园林植物,影响其观赏价值和绿化效果。该研究采集的8种园林植物中,鸢尾(Irissp.)、月季(Rosasp.)、桃树(Amygdalussp.)和海棠(Malussp.)病毒病的相关研究不多[18-21],而北京市还没有鸢尾(Irissp.)和海棠(Malussp.)病毒病的相关报道。此外,大叶黄杨(Buxussp.)、棣棠花(Kerriasp.)和女贞(Ligustrumsp.)在中国更鲜有相关病毒病的记录。

目前,RT-PCR方法除能检测病毒外,也能根据核苷酸序列检测分析给相关的病毒分离物划分株系[22]。该研究使用间接ELISA和RT-PCR方法对北京市昌平地区园林植物进行TMV的检测,在桃树和海棠中获得阳性样品。TMV寄主范围虽广,中国未见TMV侵染蔷薇科苹果属海棠的报道,少见TMV侵染蔷薇科桃属的报道[23]。

将TMV不同分离物的CP核苷酸序列与中国报道的TMV分离物序列进行分析比对,中国烟草花叶病毒桃树分离物TMV-Bjts和中国烟草花叶病毒海棠分离物 TMV-Bjht都归属TMV组2。该研究检测的样品种类有限,今后应该扩大检测地区,增加检测样品的数量,进一步明确中国园林植物TMV的发生情况。

猜你喜欢
花叶病毒园林植物海棠
张家口市园林植物病虫害防治现状及措施
中椒1615 号
侵染萝卜的油菜花叶病毒广东分离物分子特征及其致病性分析
西瓜花叶病毒病的主要症状及防治方法
读《明天要远足》,写“我要去远足”
《大嘴狗》
找春天①
西北园林植物景观的空间意象与结构解析研究
园林植物害虫种类及防治技术
海棠酒满