尹 苗,扶星星,董鹏宇,王 聪,陈俊巧,陈希文
( 1. 四川百诺吉科技有限公司,四川 绵阳 621000 ;2. 四川生猪重大疫病监测与防控工程研究中心,四川 绵阳 621000 )
猪细小病毒(PPV)是引起猪繁殖障碍的常见病毒之一,目前包括猪细小病毒1 型~7 型(PPV1~PPV7)。1965年,德国科学家在细胞污染物中首先分离到PPV1,该病毒主要引起猪不育、胚胎和胎儿死亡、木乃伊化胎儿和死产等[1],造成猪的繁殖障碍,影响猪群健康以及猪的生产性能。之后PPV2~PPV7 也陆续被发现并报道[2-4],给猪群健康及养猪业发展造成了严重威胁[5-8]。PPV4属细小病毒科、细小病毒亚科、博卡病毒属[9],是美国科学家于2009年在2005年暴发圆环病毒2型(PCV2)的病死猪病料中检测到的新病毒[10]。2012 年,黄律等[11]首次在我国发现了PPV4。PPV4 具有快速感染性,对猪肺脏以及肠道器官组织的嗜性最强,主要引起猪呼吸道疾病和繁殖障碍等,严重影响猪群的生产性能和经济效益[9]。我国目前在PPV4方面的研究报道不多,本研究通过采集发病猪场的猪肺脏、淋巴结、血液等病料,经PCR扩增和全基因组测序成功鉴定到1株新型PPV4,综合运用生物信息学软件对分离株进行遗传变异和全基因组分析,为丰富我国PPV4 基因数据并为其遗传变异、疫苗研究、疫病防控等提供参考。
病料为四川地区某发病猪场有呼吸道症状和繁殖障碍症状的猪肺脏、淋巴结、血液等,由四川生猪重大疫病监测与防控工程研究中心保存。
FineMag 快速磁珠法病毒DNA/RNA 提取试剂盒(济凡生物科技(北京)有限公司);琼脂糖(上海必德生物技术有限公司);2×Taq PCR 预混试剂Ⅱ、ddH2O、DL 2000 DNA Marker(天根生化科技(北京)有限公司);GoldView I型核酸染色剂(北京索莱宝科技有限公司)。T100 PCR仪、凝胶成像仪(美国Bio-logic公司);EL204-IC电子分析天平(梅特勒-托利多仪器(上海)有限公司)。
运用Primer Premier 5软件进行引物设计,对比选择条件适合的引物,将设计好的引物使用Primer-BLAST 工具进行引物特异性检查(网址为https://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/);应用DNAMAN 软件进行测序结果拼接。应用ORFfinder工具对全基因进行开放阅读框的预测(网址:https://www.ncbi.nlm.nih.gov/orffinder/);应用DNAMAN 软件进行DNA 多序列比对以及氨基酸对比分析;使用MEGA-X软件构建系统发育树。
根据相关报道[12]合成特异性检测引物(PPV4-F:5'-TGATGAACATTGGCAGGGCA-3'、PPV4-R:5'-ATGGACCTGTGTAGCGATGA-3',目的片段大小180 bp。根据GenBank公布的PPV4全基因序列合成全基因分段扩增引物,送至宝生物工程(大连)有限公司合成。PPV4 全基因分段扩增引物信息见表1。
表1 PPV4全基因分段扩增引物信息Tab.1 Primers imformation for PPV4 whole gene segmentation amplification
使用FineMag快速磁珠法病毒DNA/RNA提取试剂盒提取样品核酸,-80 ℃冰箱保存。
PPV4 PCR 扩增体系(25μL):2×Taq PCR Master Mix 12.5 μL、10 μmol/L 的上下游引物各1 μL、ddH2O 8.5 μL、DNA 模板2 μL。PCR反应程序:94 ℃预变性5 min;94 ℃变性30 s,57 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共35 个循环;72 ℃延伸7 min。反应程序:95 ℃预变性5 min,95 ℃变性30 s,57 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min。
取5 μL PCR 产物进行1.5%琼脂糖凝胶电泳,将符合预期目的条带的PCR产物送华大基因进行测序。
将测序结果进行BLAST比对,应用DNAMAN软件中Sequence-Sequence Assembly 工具进行PPV4 全基因分段扩增测序结果拼接。运用ORFfinder、DNAMAN、MEGAX等生物信息学软件进行全基因分析。
图1 PPV4鉴定结果Fig.1 PPV4 identification results
由图1可知,提取的DNA用检测引物进行PCR扩增和电泳,在约180 bp处出现了目的条带,与预期大小一致。
图2 PPV4全基因分段扩增结果Fig.2 Results of whole gene segment amplification of PPV4
由图2 可知,将提取的DNA 用全基因扩增引物进行PCR扩增和电泳,分别在1 128、1 015、830、1 095、983、764和788 bp位置出现目的条带,与预期条带大小相符。
选取其中1株PPV4阳性样品(命名为PPV4-MY),使用DNAMAN将PPV4-MY株与本地参考序列进行多序列比对,全基因核苷酸一致性为98.8%~99.2%,与2017 年山东的SDWF20170530-68 毒株(MZ577035.1)一致性最高,与2006 年美国PPV4(NC_014665.1)一致性最低,结果见图3~图5。
图3 PPV4全基因多序列比对前端Fig.3 PPV4 whole gene multiple sequence alignment front-end
图5 PPV4全基因多序列比对后端Fig.5 Back end of PPV4 whole gene multiple sequence alignment
由图3~图5 可知,PPV4 全基因开始与末端各序列间具有较大差异,在全基因中间各序列差异较小,序列一致性高。2006 年美国PPV4(NC_014665.1)与2018 年PPV4 P1 OK/USA分离株(MW073110.1)比其他本地参考序列前端多出250~490 bp,比PPV4-MY 前端多出380 bp;在PPV4 多序列比对末端,PPV4-MY 与2008 年巴西(KY586146.1)检出的PPV4比其他本地序列长约200 bp。
对PPV4-MY 与其他本地PPV4 全基因构建系统发育树(Neighbor-Joining建树),见图6。
图6 PPV4-MY全基因建树Fig.6 PPV4-MY whole gene establishment
由图6 可知,PPV4-MY 与2017 年国内发现的山东SDWF20170530-68 毒株(MZ577035.1)、2017 年韩国171206-10-PPV4 毒株(MH921902.1)处于同一小分支,亲缘性较近,共同特征较多。与江苏(HM031134.1、HM031135.1)、巴西(KY586146.1)、韩国另外3 株毒株(MH921910.1、MH921911.1、MH921915.1)亲缘性较远。
PPV 会引起猪的繁殖障碍,降低仔猪的出生率,特别是新型PPV发现以来。虽然目前有疫苗可对PPV1进行防控,但PPV2~PPV7尚无有效疫苗。因此,为防控猪细小病毒病应从源头控制,定期检测PPV抗体,严格防控传染病,提高猪群质量,减少经济损失。PPV4感染范围广,传播途径多,具有很强的组织嗜性,尤其是肠道,严重影响猪的生长性能。自2012年PPV4在我国首次发现起,各地相继出现疫情相关报道。2012 年,黄律等[9]对我国部分地区2006—2011 年的样品开展流行病学调查,总阳性率为14.07%;2023年,李吉祥[12]研究了我国PPV1~PPV7流行演化,指出其实早在1996 年我国猪群已存在PPV4 的感染。2020 年,张鑫杰等[13]在福建省进行PPV4 的分子流行病学调查,PPV4 阳性率为9.09%。2021 年,Li 等[14]对2016—2020年部分地区样品进行调查,PPV4检出率为4.37%。
本研究对测序拼接的PPV4 全基因进行序列分析,发现PPV4-MY全基因前端和后端与其他本地序列具有较大差异,中间差异很小。美国毒株普遍比其他地区毒株前端多250~490 bp 左右,而PPV4-MY 与巴西毒株的后端比其他全基因序列长,提示了PPV4 可能在适应宿主或传播时发生了一定的变异,使前端或后端部分基因发生了缺失;也可能是由于当初技术不成熟,导致PPV4 测出的全基因比实际的短。此前有研究发现,PPV4 基因组结构为首尾相连环状结构,并且此结构对PPV4 持久宿主感染可能具有一定作用[15]。夏娜等[16]报道称,PPV 感染过程中,其非结构蛋白可与自噬相关蛋白、RAB2A 互作。这种缺失曾在腺病毒(AAV)中发现,并且不影响其感染性[17-18]。但目前关于PPV4 的缺失无相关研究,提示还需要进一步研究PPV4 的全基因长度以及发现相应缺失增添对PPV4 的表达等有无相应影响。对PPV4-MY构建系统发育树分析发现,其与2017 年国内发现的山东SDWF20170530-68 毒株、2017 年韩国171206-10-PPV4 毒株亲缘性近,在同一分支,共同特征较多。
综上所述,本研究从发病猪场病料中成功鉴定到1 株新型PPV4(PPV4-MY),运用生物信息学软件对PPV4-MY 进行遗传变异和全基因组分析,系统进化树构建结果表明其与2017 年山东株(SDWF20170530-68)、2017 年韩国株(171206-10-PPV4)亲缘关系最近。本研究结果丰富了我国PPV4的基因数据,为PPV4的遗传变异、疫苗研究、疫病防控等提供了理论依据。
本研究结果显示,PPV4-MY 全基因组存在一定程度的突变,全基因组前端和末端各序列存在较大差异,中段序列基本一致,差异较小;系统发育树分析发现,分离株PPV4-MY与山东、韩国检出的毒株亲缘性最近。