结核分枝杆菌蛋白抗原的研究进展

2015-01-23 15:07王洁玲唐余燕余永胜
中国医药导报 2015年36期
关键词:结核病抗原特异性

王洁玲 唐余燕 余永胜

上海交通大学附属第六人民医院感染科,上海 200233

结核分枝杆菌(Mycobacterium tuberculosis,MTB)是胞内寄生菌, 宿主主要依靠细胞免疫来清除感染,因此, 具有特异性免疫原性的MTB 蛋白抗原一直吸引着研究者的目光。随着近年来基因重组与蛋白纯化技术的不断发展, 已经获得多种结核杆菌蛋白,MTB蛋白具有抗原性,根据定位主要分为分泌蛋白、细胞壁蛋白和细胞浆蛋白。 现将MTB 的蛋白抗原应用研究进展综述如下:

1 MTB 分泌蛋白

1.1 6 kD 早期分泌性抗原靶(6 kD early secretory antigenic target,ESAT6)

分泌蛋白ESAT6 是从MTB 短期培养滤液中纯化分离出的蛋白质,分子量为9904 D。 ESAT6 在结核病的保护性细胞免疫反应中发挥重要作用,诱导特异性CD4+T 细胞和CD8+T 细胞(细胞毒性T 细胞,CTL)迅速增殖并释放高水平的γ 干扰素(IFN-γ),有效地激活巨噬细胞,提高巨噬细胞对胞内结核杆菌的生长抑制作用和杀伤能力[1-2]。 Mir 等[3]试验提示ESAT6 蛋白刺激结核杆菌感染小鼠的淋巴细胞增殖,诱导模型小鼠淋巴细胞产生大量的IFN-γ,进而降低小鼠的荷菌量,具有免疫治疗潜力,进一步试验显示它还可以协同辅助传统抗结核化疗。 ESAT6 是在MTB 早期感染中起主要作用的抗原,同时拥有T 细胞及B 细胞抗原决定簇,可诱导C57BL/6 小鼠细胞免疫和体液免疫反应增强[4]。ESAT6 抗原仅存在于致病性分枝杆菌中,卡介苗(Bacillus Calmette-Guerin,BCG)及其他非致病性分枝杆菌中并不存在,这一特性有助于其成为诊断MTB 感染的特异性抗原。Feng 等[5]研究表明结核患者血清中抗ESAT6 抗体含量低, 单独作为结核病血清学诊断试验意义不大, 然而ESAT6 结核蛋白可作为结核病血清学诊断的组合抗原之一。 此外,ESAT6 蛋白与MTB 致病性相关, 卡介苗在传代过程中丢失编码ESAT6 的基因, 这很可能是卡介苗对肺结核免疫保护效果不理想的原因之一, 进一步研究ESAT6 对宿主免疫调节的机制将有助于疫苗的合理没计和效果评价。Yuan 等[6]将编码EAAT6 蛋白的DNA 疫苗用于小鼠结核病模型的治疗取得了一定的效果,并能够显著降低小鼠结核病的复发率。

1.2 培养滤液蛋白10 (10 kD culture filtrate protein,CFP10)

MTB 培养滤液蛋白10 又称为Mtb b11 或Mtb SA-10,是由Rv3874(1hp 基因)编码的分子量为10 kD 的蛋白质。 CFP-10 与ESAT6 共同存在于MTB 短期培养滤液里,1hp 和esat6 基因都位于MTB 基因组RD1位点上,属同一转录单位,有学者认为这两种蛋白不仅协同表达,而且功能上也可能相辅相成。 CFP10 能够刺激机体产生特异性抗体,可以用作特异的皮肤试验抗原和血清学试验的抗原。 Essone 等[7]、Luo 等[8]用ESAT6 和CFP10 复合抗原诊断MTB 感染获得了较高的特异性和敏感性,尤其是能够区分MTB 自然感染和BCG 接种以及非致病性分枝杆菌感染。Shaban 等[9]研究表明编码CFP10 蛋白ESAT6 蛋白的多价DNA疫苗能产生显著的潜在肺免疫应答,刺激特异性T 细胞反应可激发外周血单个核细胞增殖并产生IFN-γ,降低MTB 感染小鼠模型90%的细菌载量, 其中CD4 T 细胞反应和BCG 疫苗相似,CD8 T 细胞免疫优于BCG。 另外研究表明ESAT6 和CFP10 在MTB 和HIV合并感染者的诊断中也有较高的敏感性和特异性,相信它们在作为新型诊断制剂方面将会具有广泛的应用前景[10]。

1.3 分泌蛋白MTB8.4

MTB8.4 蛋白是从结核杆菌H37Rv 株培养滤液中纯化分离得到,由Rv1174c 基因编码,其成熟蛋白(不含信号序列)分子量为8.4 kD。 低剂量MTB8.4 蛋白即可诱导机体强烈的免疫反应:一方面有效刺激机体的体液免疫,产生高水平的IgG1和IgG2;另一方面,诱导机体的CD4+Th1 型细胞免疫反应,分泌高水平的IFN-γ,并产生特异性CTL。 MTB8.4 可以成为结核病DNA 疫苗的候选抗原或亚单位疫苗的组分, 用于结核病的预防。 Xin 等[11]应用MTB8.4 构建亚单位疫苗免疫小鼠后,诱导特异性细胞免疫反应,以Th1 型反应为主,保护小鼠抵御毒性结核杆菌的攻击,获得与BCG 相似的免疫效果。 MTB8.4 适用于人类免疫缺陷病毒(human immunodeficiency virus,HIV)合并MTB感染的诊断,可以作为未出现临床症状但已感染结核病的诊断标志,让患者能够早期接受治疗[12]。

1.4 分泌蛋白MPT63

MPT63 抗原是MTB 分泌的与MTB 毒力相关的小分子量蛋白,分子量为16 kD,编码基因是Rv1926c。该抗原蛋白存在于MTB 复合群中,在环境MTB 中则不存在该抗原的基因。 Mustafa[13]研究表明,MPT63 蛋白是一种特异性抗原,诱导患者机体产生Th1 型细胞免疫应答,刺激T 淋巴细胞的免疫反应和诱导IFN-γ产生,具有较强的免疫原性。 MPT63 抗原还可以诱导体液免疫, 曾被应用于牛结核病血清学诊断的研究,大多数活动性结核患者对MPT63 抗原产生高水平的抗体,检测血清抗体的敏感性和特异性分别为15.0%和98.7%,是血清学诊断试剂的必然方向[14]。

1.5 MPT64

MPT64 又名MPB64, 是最早发现的结核杆菌特异性抗原, 分子量为26 kD, 由mpt64 基因编码,占MTB 的分泌蛋白总量的8%。 研究表明,MPT64 蛋白基因在普通弱毒株BCG 中有变化, 作为疫苗的BCG中不含该抗原基因,MPT64 蛋白的这种缺失性, 能很好地使其作为血清诊断和新疫苗的候选抗原。研究发现MPT64 蛋白的T 淋巴细胞抗原表位主要在124~143 位氨基酸残基区域,MPT64 抗原具有较好的稳定性、特异性和敏感性,是用作血清学诊断试剂抗原的必然方向[15]。 该抗原可由大多数MTB 感染者机体免疫识别, 此外小鼠等动物实验结果都显示其主要诱导机体特异性CTL 的形成和IFN-γ 的分泌,可抵御MTB 的感染[16]。

1.6 MPT32

有学者从MTB 培养液中分离出MPT32, 并因它的高LI 值而定义为分泌蛋白, 进一步试验克隆相关基因, 其推导出来的氨基酸序列为:DPEPAPPVPTTAASPPSTAAAPPAPA, 因为该段序列中脯氨酸和丙氨酸所占比例较高,分别为21.7%和19.0%,故该蛋白序列的编码基因命名为apa。 MPT32 抗原与麻风分枝杆菌的纤维连接蛋白具有同源性[17]。抗原MPT32 在结核病进展早期(早于广泛空洞形成或体内胞外复制)由MTB 分泌,根据这一特性,MPT32 抗原具有早期结核病的血清早期诊断价值。 Wu 等[18]研究MTB17 种抗原在结核病血清学诊断中的应用价值, 发现MPT32能刺激机体产生特异性抗体, 并可与其他MTB 抗原形成互补,提高结核病患者尤其是菌阴肺结核及肺外结核病的阳性检出率。

1.7 抗原85(Ag85)复合物

Ag85 复合物是一组具有较强免疫活性的抗原,包括Ag85A、Ag85B 和Ag85C 三个组分,可占结核菌分泌蛋白总量的30%~40%。 Ag85 复合物能和人的纤维结合蛋白(fibronectin,FN)结合,大量存在于活动性结核病患者血清中,而非活动性结核病或其他肺部疾病患者等血清中则不存在。 Ag85 复合物黏附于细胞表面,与MTB 的致病性密切相关[19]。Ag85 复合物有分枝菌酸转移酶活性, 使海藻糖转移和沉积于细胞壁,在细胞壁合成的晚期发挥重要作用[20]。 分枝杆菌各菌株均可分泌Ag85,Ag85 分子具有特异性T 细胞识别位点,Beamer 等[21]报道用MTB Ag85 复合物编码基因的质粒DNA 免疫小鼠, 诱导小鼠产生很强的细胞免疫和体液免疫反应, 能显著促进T 细胞增殖, 活化CD8+T 细胞,并产生大量白细胞介素(IL)-2、IFN-γ、肿瘤坏死因子α(TNF-α)等因子,能够清除MTB 的感染。Husain 等[22]用Ag85 蛋白免疫BALB/c 小鼠的试验研究表明Ag85 抗原可诱导特异性的细胞核体液免疫反应,可刺激机体产生Th1 型细胞因子,并证明可以诱导增强BCG 疫苗的免疫保护效力。

2 MTB 胞壁蛋白

MTB 细胞壁主要是结核菌蛋白、分枝杆菌酸、半乳聚糖及甘露聚糖。 由于胞壁蛋白存在于细胞的表面, 脂蛋白类抗原是引起免疫反应的一类主要抗原,如38、27、19、16 kD 等。 脂蛋白38 kD 抗原存在于多种分枝杆菌中,参与磷酸盐代谢,脂质部分锚定在质膜上,具有磷酸盐转运活性。 MTB 膜蛋白16 kD 具有结核杆菌特异的抗原表位,为小分子热休克蛋白家族成员之一。 Koz'lowska 等[23]发现38 kD 蛋白诊断活动性结核、16 kD 蛋白抗原诊断非活动性结核的效果非常好,从而提出联合应用蛋白抗原是血清学诊断发展的方向。

3 MTB 胞浆蛋白

胞浆蛋白大体有酶蛋白和应激蛋白等, 承担MTB 自身代谢及抵抗免疫系统攻击的作用。 超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)由4 种相对分子量约为23 kD 的亚单位组成, 与MTB 消除活性氧基团有关,并消除宿主产生的活性氧基团以逃避机体杀伤作用[24]。 应激蛋白又称为热休克蛋白(heat shock protein,HSP),参与蛋白质转位、折叠和装配等重要胞生理活动,被称为“分子伴侣”。 热休克蛋白通过蛋白与蛋白之间的相互作用发挥许多调节功能,对细胞有保护作用。 作为抗原HSP 不适用于人类疫苗的研究,因为热休克蛋白高度保守,在不同的菌属,甚至真菌细胞的同类蛋白也有很高的同源性[25]。

综上所述,随着近年来基因重组与蛋白纯化技术的不断发展,已经获得多种结核杆菌蛋白,MTB 蛋白具有抗原性,可以诱导机体产生特异性的细胞免疫和体液免疫,这些蛋白对开发结核病的诊断、皮试反应、发病机制研究以及开发新疫苗均具有重要意义。

[1] Matvieieva N,Shakhovsky A,Kvasko O,et al. High frequency genetic transformation of cichorium intybus L. using nptⅡgene as a selective marker [J]. TSitol Genet,2015,49(4):11-16.

[2] Biraro IA,Egesa M,Kimuda S,et al. Effect of isoniazid preventive therapy on immune responses to mycobacterium tuberculosis:an open label randomised,controlled,exploratory study [J]. BMC Infect Dis,2015,15(1):438.

[3] Mir SA,Verma I,Sharma S. Immunotherapeutic potential of recombinant ESAT-6 protein in mouse model of experimental tuberculosis [J]. Immunology letters,2014,158(1-2):88-94.

[4] Lu Y,Xu Y,Yang E,et al. Novel recombinant BCG coexpressing Ag85B,ESAT-6 and Rv2608 elicits significantly enhanced cellular immune and antibody responses in C57BL/6 mice [J]. Scand J Immunol,2012,76 (3):271-277.

[5] Feng X,Xiu B,Chen K,et al. Enhanced serodiagnostic utility of novel Mycobacterium tuberculosis polyproteins [J].J Infect,2013,66(4):366-375.

[6] Yuan W,Dong N,Zhang L,et al. Immunogenicity and protective efficacy of a tuberculosis DNA vaccine expressing a fusion protein of Ag85B-Esat6-HspX in mice [J]. Vaccine,2012,30(14):2490-2497.

[7] Essone PN,Chegou NN,Loxton AG,et al. Host cytokine responses induced after overnight stimulation with novel M. tuberculosis infection phase-dependent antigens show promise as diagnostic candidates for TB disease [J]. PLoS One,2014,9(7):e102584.

[8] Luo W,Qu ZL,Xie Y,et al. Identification of a novel immunodominant antigen Rv2645 from RD13 with potential as a cell-mediated immunity-based TB diagnostic agent[J].J Infection,2015. [Epub ahead of print].

[9] Shaban K,Amoudy HA,Mustafa AS. Cellular immune responses to recombinant Mycobacterium bovis BCG constructs expressing major antigens of region of difference 1 of Mycobacterium tuberculosis[J].Clin Vaccine Immunol,2013,20(8):1230-1237.

[10] Fang Z,Van Der Merwe RG,Waren RM,et al. Assessing the progress of Mycobacterium tuberculosis H37Rv structural genomics [J]. Tuberculosis (Edinb),2015,95(2):131-136.

[11] Xin Q,Niu H,Li Z,et al. Subunit vaccine consisting of multi-stage antigens has high protective efficacy against Mycobacterium tuberculosis infection in mice [J]. PLoS One,2013,8(8):e72745.

[12] Ablanedo-Terrazas Y,Alarado-de la Barrera C,Hernandez-Juan R,et al. Xpert MTB/RIF for diagnosis of tuberculous cervical lymphadenitis in HIV-infected patients[J].Laryngoscope,2014,124(6):1382-1385.

[13] Mustafa AS. Comparative evaluation of MPT83(Rv2873)for T helper-1 cell reactivity and identification of HLApromiscuous peptides in Mycobacterium bovis BCG -vaccinated healthy subjects [J]. Clin Vaccine Immunol,2011,18(10):1752-1759.

[14] Phong TQ,Ha do TT,Volker U,et al. Using a label free quantitative proteomics approach to identify changes in protein abundance in multidrug-resistant mycobacterium tuberculosis [J]. Indian J Microbiol,2015,55 (2):219-230.

[15] Kumar N,Agarwal A,Dhole TN,et al. Rapid identification of Mycobacterium tuberculosis complex in clinical isolates by combining presumptive cord formation and MPT64 Antigen Immunochromatographic Assay [J]. Indian J Tuberc,2015,62(2):86-90.

[16] Arora J,Kumar G,Verma AK,et al. Utility of MPT64 antigen detection for rapid confirmation of Mycobacterium tuberculosis complex [J]. J Glob Infect Dis,2015,7(2):66-69.

[17] Mustafa T,Leversen NA,Sviland L,et al. Differential in vivo expression of mycobacterial antigens in Mycobacterium tuberculosis infected lungs and lymph node tissues[J].BMC Infect Dis,2014,14:535.

[18] Wu X,Yang Y,Zhang J,et al. Comparison of antibody responses to seventeen antigens from Mycobacterium tuberculosis [J]. Clin Chim Acta,2010,411(19-20):1520-1528.

[19] Schmidt-Schultz TH,Schultz M. AG 85,a major secretion protein of Mycobacterium tuberculosis,can be identified in ancient bone [J]. Tuberculosis(Edin),2015,95(Suppl 1):S87-S92.

[20] Favrot L,Lajiness DH,Ronging DR. Inactivation of the Mycobacterium tuberculosis antigen 85 complex by covalent,allosteric inhibitors [J]. J Biol Chem,2014,289(36):25031-25040.

[21] Beamer GL,Cyktor J,Flaherty DK,et al.CBA/J mice generate protective immunity to soluble Ag85 but fail to respond efficiently to Ag85 during natural Mycobacterium tuberculosis infection [J]. Eur J Immunol,2012,42(4):870-879.

[22] Husain AA,Warke SR. Comparative evaluation of booster efficacies of BCG,Ag85B,and Ag85B peptides based vaccines to boost BCG induced immunity in BALB/c mice:a pilot study [J]. Clin Exp Vaccine Res,2015,4(1):83-87.

[23] Kozlowska I,Filewska M,Rozy A,et al. Evaluation of humoral immune response against mycobacterial antigens in bronchoalveolar lavage fluid from patients with pulmonary tuberculosis confirmed by genetic and culture methods [J]. Pneumonol Alergol Pol,2007,75(4):355-362.

[24] Forbes LV,Furtmuller PG,Khalilova I,et al. Isoniazid as a substrate and inhibitor of myeloperoxidase:identification of amine adducts and the influence of superoxide dismutase on their formation [J]. Biochem Pharmacol,2012,84(7):949-960.

[25] Tsukamoto Y,Maeda Y,Tamura T,et al. Polyclonal activation of naive T cells by urease deficient-recombinant BCG that produced protein complex composed of heat shock protein 70,CysO and major membrane protein-Ⅱ[J].BMC Infect Dis,2014,14:179.

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