hsa_circ_0087378在食管鳞状细胞癌组织中的表达及其对患者预后的影响

2022-07-01 08:36朱永刚王明博孟令娇单保恩河北医科大学第四医院科研中心胸外科河北石家庄050011
中国肿瘤生物治疗杂志 2022年4期
关键词:生存率靶点食管癌

朱永刚,王明博,孟令娇,单保恩(河北医科大学第四医院.科研中心;.胸外科,河北 石家庄 050011)

食管癌是全球第七大常见的恶性肿瘤,也是全球癌症相关死亡的第六大原因[1]。食管鳞状细胞癌(esophageal squamous cell carcinoma,ESCC)是中国人群食管癌的主要组织学类型[2]。尽管近年来关于ESCC 的治疗方案已有很大改进,但患者的5 年生存率仍不理想[3]。环状RNA(circular RNA,circRNA)是近年来发现的一类由共价键形成的闭合环状RNA[4-5]。由于缺乏Ploy A尾,circRNA与其相应的线性RNA相比具有高度稳定性[6-7]。越来越多的研究结果[8-12]表明,circRNA在人类细胞中广泛表达并参与包括肿瘤在内的许多疾病的发生发展。本课题分析了GEO 数据库中ESCC 和癌旁组织差异表达的circRNA,并采用qPCR 法在中国人ESCC 组织标本中进行验证,采用FISH 法在90 例ESCC 组织及癌旁组织中对筛选到的hsa_circ_0087378 进行检测,分析其表达与ESCC患者临床病理指标和预后的关系,为寻找ESCC的治疗靶点提供实验依据。

1 资料与方法

1.1 临床资料

10对经过病理验证的ESCC及癌旁组织新鲜标本取自2020年12月在河北医科大学第四医院行手术治疗的ESCC 患者;进行FISH 检测的组织样本取自于2015年10月至2016年4月在河北医科大学第四医院行手术治疗的90例ESCC患者。所有癌组织标本均经病理学检查证实为ESCC,且患者术前未行放疗、化疗。研究方案征得医院伦理委员会批准(2020ky357),入组患者或其家属均签署知情同意书。

1.2 qPCR法检测ESCC组织中hsa_circ_0087378的表达

采用TRIzol 试剂提取组织的总RNA,根据反转录试剂盒(购自Promega公司)说明书将提取的总RNA反转录为cDNA,然后使用GoTaq®qPCR Master Mix(购自Promega 公司)进行qPCR 检测,所用引物序列:U6上游为5'-CTCGCTTCGGCAGCACA-3',下游为5'-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3';hsa_circ_0087378上游为5'-CTGTGGTGGTGATTGCGTCT-3',下游为5'-ATG TCATTCGCTGCAGTTCC-3'。qPCR反应条件:预变性95 ℃5 min;95 ℃15 s,58 ℃30 s,72 ℃30 s,共40个循环;72 ℃延伸10 min。以U6为内参基因,采用2-△△CT法计算hsa_circ_0087378的相对表达量。

1.3 FISH法检测ESCC组织中has_circ_0087387的表达

组织切片经脱蜡入水后用PBS冲洗,加入预热的蛋白酶K溶液37 ℃处理20 min,PBS冲洗,加入封闭液37 ℃处理1 h,加入生物素标记的针对hsa_circ_0087378环化剪接点的特异性探针(序列为5'-TAATTT GGGTTTGCACCTTTCATGC-3')在37 ℃下杂交过夜。次日,使用缓冲液洗脱非特异性结合位点,使用Cy5标记的链霉亲和素(ZyMAXTM Grade,Invitrogen公司)检测荧光信号。DAPI复染10 min,封片后采用LSM 900共聚焦显微镜(Zeiss公司)捕获图像。

1.4 统计学处理

采用SPSS 22.0统计软件分析。符合正态分布的计量资料以表示,采用t检验分析circRNA 在组织中的表达情况。计数资料以率表示,采用卡方检验分析hsa_circ_0087378 的表达与临床病理学指标之间的关系。通过Kaplan-Meier 方法评估患者的总体生存率,通过Log-Rank检验比较各组之间的差异,以P<0.05或P<0.01表示差异有统计学意义。

2 结果

2.1 ESCC组织中has_circ_0087378表达升高最为显著

从GEO数据库中查找ESCC及癌旁组织的circRNA芯片数据集GSE131969,以|log2(FC)|≥1 和P<0.05为标准,共筛选得到602 个在ESCC 中上调的circRNA,89个下调的circRNA。图1A 为上调及下调倍数居高端的20个circRNA的差异表达图。选取10对ESCC组织及相应癌旁组织,采用qPCR法对数据库中筛查到的呈高上调前5 位的circRNA 进行验证,结果显示,hsa_circ_0087378、hsa_circ_0023984、hsa_circ_0000277、hsa_circ_0055038 在ESCC 组织中呈高表达,其中hsa_circ_0087378的表达水平最高(P<0.01;图1B)。

图1 ESCC组织和相应癌旁组织中差异表达的circRNA

2.2 hsa_circ_0087378在ESCC组织中呈高表达

FISH检测结果(图2)显示,90例癌旁组织中,21例hsa_circ_0087378 呈高表达,高表达率为23.3%(21/95);90 例ESCC 组织中,有65 例hsa_circ_0087378 呈高表达,高表达率为72.2%(65/95),结果表明,ESCC 组织中has_circ_0087387 表达水平明显高于癌旁组织(P<0.05)。

图2 FISH法检测ESCC组织和癌旁组织中hsa_circ_0087378的表达

2.3 ESCC 组织中hsa_circ_0087378 表达与ESCC 患者临床指标的关系

分析ESCC 组织中has_circ_0087387 表达与患者临床指标的关系,结果(表1)显示,hsa_circ_0087378 的高表达与临床分期和淋巴结转移具有明显关联(均P<0.05)。

表1 ESCC组织中hsa_circ_0087378表达与ESCC患者临床指标的关系

2.4 hsa_circ_0087378高表达的ESCC患者预后较差

生存分析结果(图3)显示,hsa_circ_0087378 高表达组的ESCC 患者5 年总生存率明显低于低表达组患者(P=0.005),提示hsa_circ_0087378 可能是ESCC患者预后不良的重要指标。

图3 hsa_circ_0087378的表达与ESCC患者5年总生存率的关系

3 讨论

近年来,越来越多的研究表明,circRNA 在食管癌的发展中起着至关重要的作用,有望成为食管癌早期诊断、预后判断的分子标志物及治疗靶点[13-16]。例如,hsa_circ_0000277 可以通过抑制miR-4766-5p的功能,从而上调层粘连蛋白α1(laminin alpha 1,LAMA1),促进ESCC 的进展[17]。circRNA has_circ_0006168 可通过调节miR-194-5p/JMJD1C 轴而增强ESCC 对紫杉醇的抗性[18]。hsa_circ_0000700 通过作为miR-1229 的分子海绵促进ESCC 细胞的增殖和迁移[19-20]。

本研究通过GEO 数据库分析了ESCC 组织和其相应癌旁组织中差异表达的circRNA,并以qPCR 法验证,结果发现hsa_circ_0087378、hsa_circ_0023984、hsa_circ_0000277、hsa_circ_0055038 在ESCC 组织中呈高表达,其中hsa_circ_0087378 表达水平最高。随后采用FISH法检测了hsa_circ_0087378在90例中国人ESCC组织及其相应的癌旁组织中的表达,发现其在ESCC 组织中的表达明显高于其相应的癌旁组织,并且其表达与ESCC 患者的临床分期及淋巴结转移具有明显关联。此外,生存分析结果表明,hsa_circ_0087378 的高表达与ESCC 患者的5 年总生存率较差有关联,其可作为ESCC患者预后不良的指标。以上结果表明,hsa_circ_0087378 可能在ESCC进展中发挥了促癌作用,推动了ESCC的发展进程。

综上,本研究为寻找ESCC的新型肿瘤生物标志物和潜在治疗靶点提供了实验依据。然而,hsa_circ_0087378在ESCC中发挥作用的具体分子机制仍不明确,需要今后深入研究。

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